Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Цель работы – изучить эффективность созревания ооцитов крупного рогатого скота in vitro в безбелковой среде MEM-α, дополненной двумя различными препаратами фолликулостимулирующего гормона (полученного из свиных гипофизов и рекомбинантного человеческого ФСГ). Критерием успешного созревания считали способность ооцитов после оплодотворения развиваться до стадии морулы-бластоцисты и бластоцисты. Показано, что ооциты, созревавшие в присутствии рекомбинантного человеческого гормона, лучше развивались до стадии морулы-бластоцисты (в процентах от дробившихся эмбрионов), и этот эффект сохранялся при развитии до стадии бластоцисты. Заключили, что рекомбинантный ФСГ человека может использоваться для созревания ооцитов крупного рогатого скота in vitro наравне с “классическим” гормоном, полученным из свиных гипофизов.
$11. Сметанина И.Г., Татаринова Л.В., Кривохарченко А.С. Оплодотворение ооцитов крупного рогатого скота invitro в безбелковой культуральной системе // Онтогенез. – 2006. – Т. 37. – № 6. – С. 438-443.
$12. Сметанина И.Г., Татаринова Л.В., Кривохарченко А.С. Влияние гормонов на созревание ооцитов крупного рогатого скота invitro // Бюлл. экспер. биол. – 2014. – Т. 157. – № 5. – С. 655-658.
$13. Сметанина И.Г., Татаринова Л.В., Кривохарченко А.С. Влияние гипоксантина в низких концентрациях на созревание и оплодотворение ооцитов крупного рогатого скота in vitro // Известия РАН. Серия биологическая. – 2017. – Т. 44. – № 5. – C. 1-4.
$14. Afnan M. Identifying real differences in live birth rates between HMG and rFSH in IVF // Reprod. Biomed. Online. – 2009. – Vol. 18 (Suppl. 2). – P. 25-30.
$15. Bavister B.D., Leibfried M.L., Lieberman G. Development of preimplantation embryos of the golden hamster in a defined culture medium // Biol. Reprod. – 1983. – Vol. 28. – P. 235-247.
$16. Bjercke S., Tanbo T., Abyholm T. et al. Clinical outcome following stimulation with highly purified hMG or recombinant FSH in patients undergoing their first treatment cycle of IVF or ICSI //Acta Obstet. Gynecol. Scand. – 2010. – Vol. 89. – P. 1053-1060.
$17. Carvalho P.D., Hackbart K.S., Bender R.W. et al. Use of a single injection of long-acting recombinant bovine FSH to superovulate Holstein heifers: a preliminary study // Theriogenology. – 2014. – Vol. 82. – P. 481-489.
$18. Сekleniak N.A., Combelles C.M.H., Ganz D.A. et al. A novel system for in vitro maturation of human oocytes // Fertility and Sterility. – 2001. – Vol. 75. – P. 1185-1193.
$19. Сoomarasamy A., Afnan M., Cheema D. et al. Urinary hMG versus recombinant FSH for controlled ovarian hyperstimulation following an agonist long down-regulation protocol in IVF or ICSI treatment: a systematic review and meta-analysis // Hum. Reprod. – 2008. – Vol. 23. – P. 310-315.
$110. Fesahat F., Firouzabadi R.D., Faramazzi M., Ali Khalili M. The effects of different types of media on in vitro maturation outcomes of human germinal vesicle oocytes retrieved in intracytoplasmic sperm injection cycles // Clin. Exp. Reprod. Med. – 2017. – Vol. 44. – P. 79-84.
$111. Frydman R., Howles C.M., Fruong F. A double-blind, randomized study to compare recombinant human follicle stimulating hormone (FSH; Gonal-F) with highly purified urinary FSH (Metrodin HP) in women undergoing assisted reproductive techniques including intracytoplasmic sperm injection // Hum. Reprod. – 2000. – Vol. 15. – P. 520-525.
$112. Hesser M.W., Morris J.C., Gibbons J.R. // Advances in recombinant gonadotropin production for use in bovine superovulation // Reprod. Domestic Anim. – 2011. – Vol. 46. – P. 933-942.
$113. Jee B.C., Suh C.S., Kim Y.B. et al. // Clinical efficacy of highly purified hMG versus recombinant FSH in IVF/ICSI cycles: a meta-analysis // Gynecol. Obstet. Invest. – 2010. – Vol. 70. – P. 132-137.
$114. Moro F., Scarinci E., Palla C. et al. Highly purified hMG versus recombinant FSH plus recombinant LH in intrauterine insemination cycles in women >35years: a RCT // Hum. Reprod. – 2015. – Vol. 30. – P. 179-185.
$115. Pongsuthirak P., Songveeratham S., Vutyavanish T. Comparison of blastocyst and Sage media for in vitro maturation of human immature oocytes // Reproductive Sience. – 2015. – Vol. 22. – P. 343-346.
$116. Takagi M., Kim J.H., Izadyar F. et al. Impaired final follicular maturation in heifers after superovulation with recombinant human FSH // Reproduction. – 2001. – Vol. 121. – P. 941-951.
$117. Tervit H.R., Whittingham D., Rowson L. Successful culture in vitro of sheep and cattle ova // J. Reprod. Fertil. – 1972. – Vol. 30. – P. 493-497.