Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Цель исследования − изучить влияние парентерального введения глубокостельным коровам синтетического аналога эстрона на выделение иммуногенных факторов и на физиолого-биохимические показатели крови новорожденных телят, отражающие состояние естественной резистентности. В настоящее время развивается теория об участии матери в формировании иммунитета у детеныша посредством передачи в его организм материнских клеток иммунной системы (нейтрофилов, лимфоцитов, моноцитов, тканевых макрофагов) в составе молозива. Большую роль в образовании молочной железой высококачественного молозива играют женские половые гормоны – эстрогены (эстрон, эстриол, эстрадиол), синтезирующиеся в фолликулах яичников. Структурами-мишенями для эстрогенов являются половые органы – яичники, яйцеводы, матка, влагалище, а также молочные железы. Синтетический аналог женского полового гормона эстрона – «Синэстрол 2%» − это производное стильбена, обладающее действием естественного женского полового гормона эстрона, но действующее медленнее и эффективнее. Объектом исследования были 10 глубокостельных коров чёрно-пестрой породы в возрасте 2-3 отела, которые были разделены на 2 группы (контрольная и опытная) по 5 животных в каждой. Коровам опытной группы вводили парентерально препарат "Синэстрол 2%®" в дозе 1 мл на животное, однократно, за 3-6 дней до отела, коровам контрольной группы − физиологический раствор натрия хлорида. Сразу после появления сосательного рефлекса, новорожденному теленку выпаивали молозиво, собранное от его коровы-матери. В ходе опыта определяли уровень иммуноглобулинов в выпаиваемом телятам молозиве и исследовали биохимические и иммунологические показатели крови в контрольной и опытной группах. Образцы молозива отбирались из первого удоя. Через сутки после рождения в крови опытных телят по отношению к интактным отмечен более высокий уровень общего белка +9,75% (P˂0,05) и его фракций, а именно альбуминов +13,7% (P˂0,05), альфа-глобулинов + 31% (P˂0,05) и гамма-глобулинов +21,8%. Количество лейкоцитов было также более высоким в крови у опытных телят +17,2%. Через 10 суток после рождения у телят обеих групп снизилось содержание альфа- и гамма-глобулинов в крови, но оно было выше у животных опытной группы (P˂0,05). Количество лейкоцитов было более высоким у телят опытной группы за счет нейтрофилов. В целом введение синтетического аналога эстрона коровам за 3-6 дней до отела оказало положительное влияние на становление естественной резистентности и прирост живой массы у полученных от них новорожденных телят.
1. Емельяненко П.А. Иммунология животных в период внутриутробного развития. − М.: Агро-промиздат, 1987. − С. 32-33
2. Емельяненко П.А. Возрастная динамика иммуноглобулинов и естественных антител в фетальной сыворотке крови крупного рогатого скота // Доклады ВАСХНИЛ. −1975. − № 10. − С. 31-34.
3. Коляков Я.Е. Ветеринарная иммунология. − М.: Агропромиздат, 1986. − 227 с.
4. Кондрахин И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики: Справочник. – М.: КолосС, 2004. – 520 с.
5. Плященко С.И., Сидоров В.Т., Трофимов А.Ф. Получение и выращивание здоровых телят. – Минск: Ураджай, 1990. – 250 с.
6. Самбуров Н.В., Палаус И.Л. Молозиво коров его состав и биологические свойства // Вестник Курской ГСХА. – 2014. – № 4. – С. 59-61
7. Скопичев В.Г., Максимюк Н.Н.. Физиолого-биохимические основы резистентности животных. – СПб.: Издательство "Лань", 2009. – 352 с.
8. Стасевич Н.Б., Скопичев В.Г. Особенности формирования структуры паренхимы молочной железы у коров в молозивный период при влиянии иммунной системы на данный процесс // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. – 2015. – № 3. – С. 256-259
9. Тараненко А.Г. Регуляция молокообразования. – Ленинград: Агропромиздат, 1987. – 237 с.
10. Шульга Н.Н., Петрухин М.А., Желябовская Д.А. Некоторые аспекты формирования колостраль-ного иммунитета у новорожденных животных // Вестник Красноярского ГАУ. – 2012. – № 8. – С. 136-139.
11. Bush, L.J., Staley T.E. Absorption of colostral immunoglobulins in newborn calves // J. Dairy. Sci. –1980. – Vol. 63. – No. 4. – P. 672-680.
12. Eglinton B.A., Roberton D.M., Cummins A.G. Phenotype of T cells, their soluble receptor levels, and cytokine profile of human breast milk // Immunol. Cell Biol. – 1994. – Vol. 72. – P. 306-313.
13. Kelly D., Coutts A.G. Early nutrition and the development of immune function in the neonate // Proc. Nutr. Soc. – 2000. – Vol. 59. – P. 177-185.
14. Rivas R.A., Katona I.M., El Mohandes A.A. Mononuclear phagocytic cells in human milk: HLA-DR and Fc gamma R ligand expression // Biol. Neonate. – 1994. – Vol. 66. – P. 195-204.
15. Tuboly S., Bernáth S., Glávits R., Medveczky I. Intestinal Absorption of Colostral Lymphoid Cells in Newborn Piglets // Veter. Immun. Immunopath. – 1988. – Vol. 20. – P. 75-85.