Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Объектом исследования были норки (сем. Mustelidae, Neovison vison) стандартной и пастелевой окраски, которые в 2-месячном возрасте были разделены на две группы каждого окраса (n=12); контрольная группа получала обычный рацион, в рацион опытной группы включали добавку селенита натрия (Na2SeO3) по 0,2 мг на голову в сутки с 10-дневным перерывом на протяжении 4 мес. (июль - октябрь). При забое животных отбирали пробы тканей, в которых определяли активность пищеварительных ферментов в поджелудочной железе и слизистой тонкой кишки, активность антиоксидантных ферментов супероксиддисмутазы (СОД) и каталазы, а также содержание низкомолекулярных антиоксидантов – витаминов Е и А в печени и почках. Пастелевые норки отличались от темно-коричневых более высокой активностью протеазы и низкой – амилазы в поджелудочной железе, пониженным содержанием витаминов Е и А в печени, высоким уровнем витамина Е и низким содержанием витамина А в почках, а также более низкой активностью СОД в печени и каталазы в почках (P<0.05). Под влиянием селенита натрия у пастелевых норок активность амилазы и липазы в поджелудочной железе увеличилась (P<0.05), тогда как у темно-коричневых норок эти показатели не изменились. Активность протеазы и дипептидазы в тонкой кишке у темно-коричневых норок увеличилась (P<0.05), в то время как у пастелевых норок селенит натрия не оказал выраженного влияния на активность этих ферментов. Использование селенита натрия не вызвало существенного влияния на уровень витаминов Е и А в печени и почках темно-коричневых норок, тогда как у пастелевых норок выявлены значительные различия в содержании α-токоферола в печени и ретинола в почках. Таким образом, в эксперименте выявлена специфика реакции антиоксидантных ферментов на добавку селенита натрия у исследованных генотипов, обуславливающих окраску волосяного покрова, которая заключалась в снижении активности каталазы в печени и почках у темно-коричневых норок и увеличении активности СОД в печени у пастелевых норок.
1. Атлавин А.Б., Апсите М.Р. Распределение радиоактивного изотопа селена 75Se в органах и тканях цыплят // В кн.: Всасывание и обмен веществ у животных. Рига: Зинатне, 1980. – С. 91-97.
2. Барабой В.А. Биологические функции, метаболизм и механизмы действия селена // Успехи совр. биол. − 2004. – Т. 124. – № 2. – С. 157-168.
3. Белоусов Ю.Б. (Ред.) Этическая экспертиза биомедицинских исследований. Практические рекомендации. − Российское общество клинических исследователей. – 2005. – 156 с.
4. Бунатян Н.Д., Герасимова О.А., Сахарова Т.С. и др. Природные антиоксиданты как гепатопротекторы // Экспериментальная и клиническая фармакология. – 1999. – Т. 62. – № 2. – С. 64-67.
5. Вальдман А.Р., Апсите М.Р., Атлавин А.Б. и др. О влиянии селена на биохимические функции организма кур и их продуктивность // В кн.: Пищеварение и всасывание у животных. – Рига: Зинатне, 1979. – С. 156-165.
6. Галочкин В.А., Галочкина В.П. Органические и минеральные формы селена, их метаболизм, биологическая доступность и роль в организме // Сельскохозяйственная биология. – 2011. – № 4. – С. 3-15.
7. Дроздовой Г.А., Фексон Э.Г. Определение активности амилазы в биологических жидкостях // Лабораторное дело. – 1981. – № 3. – С. 138-139.
8. Зенков Н. К., Ланкин В. З., Меньщикова Е.Б. Окислительный стресс. Биохимический и патофизиологический аспекты. – М.: МАИК Наука/Интерпериодика, 2001. – 343 с.
9. Коросов А.В., Горбач В.В. Компьютерная обработка биологических данных. – Петрозаводск: Петрозаводский университет. – 2010. – 84 с.
10. Меньщикова Е.Б., Ланкин В.З., Зенков Н.К., Бондарь И.А., Круговых Н.Ф., Труфакин В.А. Окислительный стресс. Прооксиданты и антиоксиданты. – М.: Слово, 2006.– 556 с.
11. Надиров Н.К. Токоферолы и их использование в медицине и сельском хозяйстве. – М.: Наука, 1991. – 336 с.
12. Николаевская В. Р. Экспериментальное исследование переваривания белков молока в постнатальном онтогенезе: автореф. дисс... к.б.н.. − М., 1979, 21 с.
13. Скурихин В.Н., Двинская Л.М. Определение α-токоферола и ретинола в плазме крови сельскохозяйственных животных методом микроколоночной высокоэффективной жидкостной хроматографии // Сельскохозяйственная биология. – 1989. – № 4. – С. 127-129.
14. Тарвид И.Л., Кушак Р.И. Определение дипептидазной активности по уменьшению содержания субстрата // Лаб. дело. – 1982. – № 5. – С. 57-59.
15. Тютюнник Н.Н. Влияние токсических доз селенита натрия на некоторые морфологические и биохимические показатели крови норок // Учёные записки Петрозаводского госуниверситета. – Вып. 4. Вопросы звероводства. − 1971.– Т. 17. − № 3.– С. 128–134.
16. Уголев А.М., Иезуитова Н.Н., Масевич С.Г. и др. Исследование пищеварительного аппарата у человека. – Л.: Наука, 1969. – 216 с.
17. Arthur J.R., McKenzie R.C., Beckett G.J. Selenium in the immune system // J. Nutr. – 2003. – Vol. 133.– P. 1457-1459.
18. Bears R.F., Sizes I.N. A spectral method for measuring the breakdown of hydrogen peroxide by catalase // J. Biol. Chem. – 1952. – Vol. 195. − No. 1. – P. 133-140.
19. Cantor A.H., Scott M.L., Noguchi T. Biological availability of selenium in feedstuffs and selenium compounds foe prevention of exudative diathesis in chicks // J. Nutr. – 1975. – Vol. 105. – No. 1. – Р. 96-105.
20. Helander H.F. Ultrastructure and function of gastric mucoid and zymogen cells in the rat during development // Gastroenterol. – 1969. – Vol. 56. – No. 1. – P. 53-70.
21. Ip C. Lessons from basic research in selenium and cancer prevention // J. Nutr. – 1998.– Vol. 128.– P. 1845–1854.
22. Jacobs M., Frost C. Toxicological effects of sodium selenite in Sprague-Dawley rats // J. Toxicol. Environ. Health. – 1981. – Vol. 8. – P. 575-585.
23. Kim Y.Y., Mahan D.C. Comparative effect of high dietary levels of organic and inorganic selenium on selenium toxicity of growing-finishing pigs. // J. Anim. Sci. – 2001. – Vol. 79. – P. 942-948.
24. Misra H.P., Fridovich F. The role of superoxide anion in the autoxidation of epinephrine and a simple assay for superoxide dismutase // J. Biol. Chem. – 1972. – Vol. 247. – No. 10. – Р. 3170–3175.
25. Ness N.N., Einarson E.J., Lohi O. et al. Beautiful fur animals – and their color genetics. − Glostrup, Denmark: Scientifur Publ., 1988, 271 p.
26. Oldfield J.E. The two faces of selenium // J. Nutr.– 1987. – Vol. 117. – P. 2002-2008.
27. Podoll K.L., Bernard J.B., Ullrey D.E., DeBar S.R., Ku P.K., Magee W.T. Dietary selenate versus selenite for cattle, sheep, and horses // J. Anim. Sci. – 1992. – Vol. 70. – P. 1965-1970.
28. Schweigert F.J., Buchholz I. Vitamin A metabolism in carnivores with special reference to fur bearing animals // Scientifur. – 1995. – Vol. 19. – No. 4. – P. 305-307.
29. Tiwary A.K., Stegelmeier B.L., Panter K.E., James L.F., Hall J.O. Comparative toxicosis of sodium selenite and selenomethionine in lambs // J. Vet. Diagn. Invest. – 2006. – Vol. 18. – P. 61-70.
30. Tompson J.N., Skott M.L. Role of selenium in the nutrition of chick // J. Nutr. – 1969. – Vol 97. – No. 3. – P. 335-342.
31. Trapezov O.V. Black Crystal: A novel coat color mutant in the American Mink // J. Hered. − 1997a. − Vol. 88. − No. 2. − P. 164-166.
32. Trapezov O.V. A rise of new color phases in American mink (Mustela vison Schreber) in the course of selection for domestic behavior // Scientifur. − 1997b. − Vol. 21. − No. 1. − P. 41-47.