Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»

Суббота, 24 Май 202519:54

+7 (495) 996-34-15; (48438) 4-30-26

ВЛИЯНИЕ РАЗНОГО УРОВНЯ И СООТНОШЕНИЯ АМИНОКИСЛОТ В НИЗКОПРОТЕИНОВЫХ РАЦИОНАХ НА СОСТОЯНИЕ АЗОТИСТОГО ОБМЕНА, ЭФФЕКТИВОСТЬ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ КОРМА И СКОРОСТЬ РОСТА У ПОМЕСНЫХ СВИНЕЙ

Родионова О.Н.

ВНИИ физиологии, биохимии и питания животных - филиал ФНЦ

животноводства - ВИЖ им. Л.К. Эрнста, Боровск Калужской области

Номер: 3
Страницы: 67-77

Журнал: Проблемы биологии продуктивных животных

Ключевые слова:

азотистый метаболизм, добавки аминокислот, лизин, метионин, низкопротеиновые рационы, помесные поросята, продуктивность, треонин, ♂ландрас  ♀крупная белая

Аннотация:

Предложенные в последние годы применения в кормлении свиней рационов с низким содержанием сырого протеина при достаточном балансировании количества индивидуальных аминокислот при оптимальном уровне обменной энергии в корме может способствовать реализации потенциала мясной продуктивности в период выращивания животных. Иссзедование проведегно на трёх группах (n=16) помесных поросят(♂ландрас ´ ♀крупная белая) в возрасте 63 суток, которые до достижения живой массы 45-54 кг получали комбикорм на ячменно-пшеничной основе (1-я группа, контроль: в 1 кг корма 12,4 МДж обменной энергии, 120 г протеина, 7,7 г лизина, 4,6 метионина+цистеина, 4,8 г треонина; 2-я группа: 13,0; 122; 9,4; 6,1; 6,3 соответственно; 3-я группа: 13,6; 152; 10,8; 7,0; 7,2 соответственно). Эффективность использования азотистых веществ корма, суточные приросты живой массы и показатели мясной продуктивности во 2-й группе были выше, а расходы корма, сырого протеина, обменной энергии н а 1 кг прироста живой массы и 1 г отложенного белков меньше, чем в 1-й группе (P<0,05). Сдвиги в плазме крови уровня свободных аминокислот, мочевины, креатинина и активности щелочной фосфатазы, а в мышцах и печени – активности креатинкиназы, аспартатаминотрансферазы и аланинаминотрансферазы были адекватными изменениям продуктивных показателей. Заключили, что уровни обменной энергии и незаменимых аминокислот были оптимальными во 2-й группе при соотношении их в рационе по отношению к лизину (%): треонин 67, метионин+цистин 65, валин 63, лейцин+изолейцин 142, гистидин 33, триптофан 15, аргинин 54, фенилаланин+тирозин 96

Литература:

1. Еримбетов К.Т. Метаболизм белков у растущих бычков и свиней и факторы его регуляции: автореф. дисс. д.б.н. Боровск, ВИИФБиП, 2007, 31 с.

2. Еримбетов С.С., Никулин В.Н., Аширов Д.А., Еримбетов К.Т. Развитие концепции идеального протеина при совершенствовании регламентов питания птицы с учётом нутритивной ценности и физиологической роли условно незаменимых аминокислот (обзор). // Проблемы биологии продуктивных животных. 2024. № 1. С. 5-26.

3. Еримбетов К.Т., Кальницкий Б.Д., Ниязов Н.С.-А. Добавка к корму поросят и способ их кормления с использованием указанной добавки. Патент РФ 2436409. / Заявл. 23.12.2009. Опубл. 20.12.2011.

4. Пьянкова Е.В., Еримбетов К.Т., Дудин В.И. Оценка протеинового питания поросят-помесей и коррекция аминокислотного состава рациона с учётом соотношения незаменимых аминокислот в стенке кишечника. // Проблемы биологии продуктивных животных. 2015. № 1. С. 84-95.

5. Родионова О.Н., Кальницкий Б.Д. Азотистый обмен и продуктивность растущих свиней на низкопротеиновых рационах с разным уровнем обменной энергией и лимитирующих аминокислот. // Проблемы биологии продуктивных животных. 2010. № 1. С. 90-95.

6. Черепанов Г.Г., Кальницкий Б.Д. Современные подходы к оценке потребности в питательных веществах и энергии. // Методы исследований питания сельскохозяйственных животных (ред. Б.Д. Кальницкий). Боровск: ВНИИФБиП, 1998. С: 202-250.

7. Coulambe S.S., Favreon G. New the semimicro method determination of urea. // Clin. Chem. 1963. Vol. 1. nr 9. P. 23.

8. Correia A.M., Genova J.L., Saraiva A., Rocha G.C. Effects of crude protein and non-essential amino acids on growth performance, blood profile, and intestinal health of weaned piglets. // Front. Vet. Sci. 2023. Vol. 10:1243357. doi: 10.3389/fvets.2023.1243357.

9. Duarte M.E., Parnsen W., Zhang S., Abreu M.L.T., Kim S.W. Low crude protein formulation with supplemental amino acids for its impacts on intestinal health and growth performance of growing-finishing pigs. // J. Anim. Sci. Biotechnol. 2024. Vol. 15(1):55. doi: 10.1186/s40104-024-01015-6.

10. Esteves L.A.C., Monteiro A.N., Sitanaka N.Y. et al. The reduction of crude protein with the supplementation of amino acids in the diet reduces the environmental impact of growing pigs production evaluated through life cycle assessment. // Sustainability. 2021. Vol. 13. P. 4815-4822. DOI:10.3390/su13094815.

11. He W. L., Hou Y. Q., Wu G. Glutamate and glutamine are the major metabolic fuels in enterocytes of suckling piglets. // J. Anim. Sci. 2019.Vol. 97 (Suppl. 3). P. 68. doi: 10.1093/jas/skz258.141.

12. Hodkovicova N., Halas S., Tosnerova K., Stastny K., Svoboda M. The use of functional amino acids in different categories of pigs: a review. // Vet. Med. (Praha). 2023. Vol. 68. nr 8. P. 299-312. doi: 10.17221/72/2023-VETMED.

13. Han Y.G., Lee G.I., Do S.H., Jang J.C., Kim Y.Y. The effect of reduced crude protein on growth performance, nutrient digestibility, and meat quality in weaning to finishing pigs. // Animals (Basel). 2023. Vol. 13 nr 12:1938. doi: 10.3390/ani13121938.

14. Hulshof T.G., van der Poel A.F.B., Hendriks W.H., Bikker P. Amino acid utilization and body composition of growing pigs fed processed soybean meal or rapeseed meal with or without amino acid supplementation. // Animal. 2017. Vol. 11. nr 7. P.1125-1135. DOI: 10.1017/S1751731116002548.

15. Kim S.W., Chen H., Parnsen W. Regulatory role of amino acids in pigs fed on protein-restricted diets. // Curr. Prot. Pept. Sci. 2019. Vol. 20. nr 2. P. 132-138. DOI: 10.2174/1389203719666180517100746.

16. Liu Y., Azad M.A.K., Zhao X., Kong X. Crude protein content in diets associated with intestinal microbiome and metabolome alteration in Huanjiang mini-pigs during different growth stages. // Front. Microbiol. 2024. Vol. 15:1398919. doi: 10.3389/fmicb.2024.1398919.

17. Lin Q., Tu X., Li X., Gou F., Ding L., Lu Z., Feng J., Ying Y., Hu C. Effects of electrolyte balance on intestinal barrier, amino acid metabolism, and mTORC1 signaling pathway in piglets fed low-protein diets. // Anim. Nutr. 2024. Vol. 17. P. 408-417. doi: 10.1016/j.aninu.2024.03.011.

18. Limbach J.R., Espinosa C.D., Perez-Calvo E., Stein H.H. Effect of dietary crude protein level on growth performance, blood characteristics, and indicators of intestinal health in weanling pigs. // J. Anim. Sci. 2021. Vol. 99. P. 1374-1383. DOI: 10.1093/jas/skab166.

19. Marín-García P.J., Llobat L. et al. Urea nitrogen metabolite can contribute to implementing the ideal protein concept in monogastric. // Animals (Basel). 2022. Vol. 12. nr 18: 2344. doi: 10.3390/ani12182344.

20. Millet S., Aluwé M., De Boever J. et al. The effect of crude protein reduction on performance and nitrogen metabolism in piglets (four to nine weeks of age) fed two dietary lysine levels. // J. Anim. Sci. 2018. Vol. 96. P. 3824-3836. DOI: 10.1093/jas/sky254.

21. Reitman S., Frankel S. A calorimetric method for the transaminases. //Am. J. Clin. Path. 1957. Vol.1. P. 28.

22. Rocha G.C., Duarte M.E., Kim S.W. Advances, implications, and limitations of low-crude-protein diets in pig production. // Animals (Basel). 2022. Vol. 12. nr 24. P. 478-485. DOI: 10.3390/ani12243478.

23. Tang Q., Li W., Ren Z., Ding Q., Peng X., Tang Z., Pang J., Xu Y., Sun Z. Different fatty acid supplementation in low-protein diets regulate nutrient utilization and lipid and amino acid metabolism in weaned pigs model. // Int. J. Mol. Sci. 2023. Vol. 24. nr 10. P. 8501-8512. DOI: 10.3390/ijms24108501.

24. Tang Q., Lan T., Zhou C. et al. Nutrition strategies to control post-weaning diarrhea of piglets: From the perspective of feeds. // Anim. Nutr. 2024. Vol. 17. P. 297-311. doi: 10.1016/j.aninu.2024.03.006.

25. van Milgen J., Dourmad J.-Y. Concept and application of ideal protein for pigs. // J. Anim. Sci. Biotechnol. 2015. Vol. 6. P.15-25. doi: 10.1186/s40104-015-0016-1.

26. Vonderohe C.E., Mills K.M., Liu S., Asmus M.D., Otto-Tice E.R., Richert B.T., Ni J.Q., Radcliffe J.S. The effect of reduced CP, synthetic amino acid supplemented diets on growth performance and nutrient excretion in wean to Finish swine. // J. Anim. Sci. 2022. Vol. 100. nr 6. P 456-465. DOI: 10.1093/jas/skac075.

27. Wang C., Peng Y., Zhang Y., Xu J., Jiang S., Wang L., Yin Y. The biological functions and metabolic pathways of valine in swine. // J Anim Sci Biotechnol. 2023. Vol. 14. nr 1:135. doi: 10.1186/s40104-023-00927-z.

28. Wang Y., Zhou J., Wang G., Cai S., Zeng X., Qiao S. Advances in low-protein diets for swine. // J. Anim. Sci. Biotechnol. 2018. Vol. 9. P. 260-269. DOI: 10.1186/s40104-018-0276-7.

29. Wu G., Li P. The "ideal protein" concept is not ideal in animal nutrition. // Exp. Biol. Med. (Maywood). 2022. Vol. 247. nr 13. P. 1191-1201. DOI: 10.1177/15353702221082658.

30. Zhang Q., Hou Y., Bazer F.W., He W., Posey E.A., Wu G. Amino acids in swine nutrition and production. // Adv. Exp. Med. Biol. 2021. Vol. 1285. P. 81-107. DOI: 10.1007/978-3-030-54462-1_6.

31. Zhan X., Hou L., He Z. et al. Effect of miscellaneous meals replacing soybean meal in feed on growth performance, serum biochemical parameters, and microbiota composition of 25-50 kg growing pigs. // Animals (Basel). 2024. Vol. 14. nr 9:1354. doi: 10.3390/ani14091354.

32. Zhao Y., Tian G., Chen D., Zheng P., Yu J., He J., Mao X., Yu B. Effects of varying levels of dietary protein and net energy on growth performance, nitrogen balance and faecal characteristics of growingfinishing pigs. // Rev. Bras. Zootec. 2019. Vol. 48. P. 2018-2021:e20180021. DOI: 10.1590/rbz4820180021.

Journal