Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Условия функционирования, в частности рН среды, оказывают значительное влияние на активность пищеварительных ферментов, однако сведения о влиянии пробиотиков на активность ферментов, обеспечивающих начальные этапы ассимиляции белковых и углеводных компонентов корма у продуктивной птицы в зависимости от рН среды, практически отсутствуют. Цель исследования – изучить влияние рН (5.0, 7.4 и 8.3) на активность гликозидаз и протеиназ слизистой оболочки и содержимого (химуса) тонкого кишечника у цыплят белого техасского перепела (ЦП), цыплят кур кросса Росс 308 (ЦРос) и кросса Ломан Браун (ЦЛБ). Цыплята всех контрольных и опытных групп (n=13-15) содержались в одинаковых условиях, в корм птицы опытных групп получали с водой пробиотические препараты (ЦА, курунга – комплексный пробиотик; ЦРос и ЦЛБ, яросил – препарат молочнокислых и бифидобактерий). У ЦП добавка пробиотика в дозе 0.01 г/кг ЖМ в течение 3-х мес. снижала амилолитическую активность в слизистой оболочке кишечника, но повышала её в химусе (P<0.05). У ЦРос добавка пробиотика в дозе 0.6 мл/кг ЖМ. в течение 1-го мес. и у ЦЛБ в течение 2-х мес. не влияла на амилолитическую активность в слизистой оболочке кишечника, но повышала её в химусе при щелочных и нейтральных значениях рН (P<0.05). В целом, активность гликозидаз и протеиназ в слизистой оболочке и в химусе кишечника коррелировала с величиной рН (P<0.05). Наибольший эффект пробиотиков в слизистой оболочке кишечника и в химусе выявлен в зоне нейтральных и щелочных значений рН, а закисление среды снижает ферментативную активность и нивелирует положительные эффекты пробиотиков на кишечные гликозидазы и протеиназы.
1. Голованова И.Л., Филиппов А.А., Куливацкая Е.А., Скворцова Е.Г. Влияние пробиотика Яросил на активность пищеварительных ферментов в кишечнике цыплят. // Вестник АПК Верхневолжья. 2022. № 1. С. 42-48.
2. Скворцова Е.Г., Кузьмина В.В., Филинская О.В., Вострова У.А. Влияние микробиологического препарата ЭМ-Курунга на некоторые показатели жизнедеятельности цыплят. // Известия Оренбургского государственного университета. 2019. № 6. С. 297-300.
3. Уголев А.М., Иезуитова Н.М., Масевич Ц.Г., Надирова Т.Я., Тимофеева Н.М., 1969. 216 с.
4. Филинская О.В., Скворцова Е.Г., Бушкарёва А.С., Коновалов А.В. Физико-химические свойства мяса цыплят-бройлеров при использовании пробиотика «Яросил». // Вестник АПК Верхневолжья. 2021. №4. С. 52-56.
5. Шмидт Г.О. Микробиоценоз пищеварительного тракта перепелов в онтогенезе и его коррекция ЭМ-Курунгой при диарейном симптомокомплексе: автореф. дисс. … к.б.н. Новосибирск, 2012. 17 с.
6. Abou-Kassem, D.E., Elsadek M.F., Abdel-Moneim A.E., Mahgoub S.A., Elaraby G.M., Taha A.E., Elshafie M.M., Alkhawtani D.M., Abd El-Hack M.E., Ashour E.A. Growth, carcass characteristics, meat quality, and microbial aspects of growing quail fed diets enriched with two different types of probiotics (Bacillus toyonensis and Bifidobacterium bifidum). // Poult. Sci. 2021.Vol. 100. nr 1. P. 84-93.
7. Alagawany M., Elnesr Sh.S., Farag M.R. The role of exogenous enzymes in promoting growth and improving nutrient digestibility in poultry. // Iran J. Vet. Res. 2018. Vol. 19. nr 3. P. 157-164.
8. Golovanova I.L., Skvortsova E.G., Filinskaya O.V., Bushkareva A.S., Mostofina A.V., Filippov A.A., Kulivatskaya E.A., Postrash I.Y. Effect of kurunga probiotic on growth parameters, the activity of intestinal glycosidases and peptidases, and excreta quality in quail conditions. // J. Compl. Med. Res. 2022. Vol. 13. nr 1. P. 6-11.
9. Kuz'mina V.V., Skvortsova E.G., Pivovarova E.A., Bushkareva A.S., Vostrova U.A., Poltoratskaya A. Influence of sapropel on the activity of intestinal peptidases of broiler chickens. // J. Indon. Trop. Anim. 2021. Vol. 46. nr 1. P. 67-74.
10. Manafi M., Hedayati M., Khalaji S. Effectiveness of phytogenic feed additive as alternative to bacitracin methylene disalicylate on hematological parameters, intestinal histomorphology and microbial population and production performance of japanese quails. // Asian-Austr. J. Anim Sci. 2016. Vol. 29. nr 9. P. 1300-1308.
11. Popov I., Algburi A.R., Prazdnova E., Mazanko M., Elisashvili V., Bren A., Chistyakov V., Tkacheva E., Tkachev V., Donnik I., Ivanov Yu., Rudov D., Weeks R., Chikindas M.L. A review of the effects and production of spore-forming probiotics for poultry. // Animals. 2021. Vol. 11. nr 7. е.1941. https://doi.org/10.3390/ani11071941
12. Soomro R.N., El-Hack M.E.A., Shah S.S., Taha A.E., Alagawany M., Swelum A.A., Hussein E.O.S., Ba-Aawdh H.A., Saadeldin I., El-Edel M.A., Tufarelli V.. Impact of restricting feed and probiotic supplementation on growth performance, mortality and carcass traits of meat-type quails. // Anim. Sci. J. 2019. Vol. 90. nr10. P. 1388-1395.
13. Sugiharto S. Role of nutraceuticals in gut health and growth performance of poultry. // J. Saudi Soc. Agric. Sci. 2016. Vol. 15. nr 2. P. 99-111.
14. Taha A.E., Hassan S.S., Shewita R.S., El‐seidy A.A., Abd El‐Hack M.E., Hussein E.O.S., Saadeldin I.M., Swelum A.A., El‐Ede M.A. Effects of supplementing broiler diets with coriander seed powder on growth performance, blood haematology, ileum microflora and economic efficiency. // J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. 2019. Vol. 103. nr 5. P. 1474-1483.
15. Vali N. Probiotic in quail nutrition: a review // Intern. J. Poult. Sci. 2009. Vol. 8. nr 12. P. 1218-1222.
16. Yadav S., Jha R. Strategies to modulate the intestinal microbiota and their effects on nutrient utilization, performance, and health of poultry. // J. Anim. Sci. Biotech. 2019. Vol. 10. е 2. DOI: 10.1186/s40104-018-0310-9