Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
ВЛИЯНИЕ ПИТЬЕВОЙ ВОДЫ, ОБОГАЩЁННОЙ МОЛЕКУЛЯРНЫМ ВОДОРОДОМ, НА ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ И АНТИОКСИДАНТНЫЙ СТАТУС У МАЛОЙ ДЛИННОХВОСТОЙ ШИНШИЛЛЫ C СИНДРОМОМ СЕЧЕНИЯ МЕХОВОГО ПОКРОВА В УСЛОВИЯХ КЛЕТОЧНОГО СОДЕРЖАНИЯ
- Номер: 2
- Страницы: 64-72
Журнал: Проблемы биологии продуктивных животных
Аннотация:
В пушном звероводстве важным критерием здоровья животных являются уровень их адаптационных возможностей, в том числе к появлению стрессовых состояний. Цедь данной работы - исследование показателей состава крови и антиоксиданого статуса у малой длиннохвостой шиншиллы при проявлении «стрижки» (самопроизвольного выкусывания) мехового покрова, как одного из вариантов синдрома гиперкортицизма в условиях клеточного содржания. Три группы самцов Chinchilla lanigera двухмесячного возраста (n=5) со средней живой массой 270 г были сформированы методом парных аналогов и рассажены в индивидуальные клетки; I группа (контроль) не имевшая признаков «стрижки», получала основной рацион (ОР) и чистую питьевую воду; II группа, с проявлением синдрома «стижки», ОР и чистую питьевую воду; III группа, с синдромом «стрижки» - ОР и воду, обогащённую молекулярным водородом. При исследовании клеточного состава крови выявлено, что во II группе возросло против контроля количество лейкоцитов (P<0.05), эритроцитов и уровня гемоглобина(P<0.05). В III группе количество лейкоцитов, эритроцитов и гемоглобина уменьшилось по сравнению со II группой (P<0.05). В сыворотке крови во II группе отмечено увеличение против контроля уровней мочевины, общего биллирубина, активности аспартатаминотрансферазы, аланинаминотрансферазы и щелочной фосфатазы на фоне снижения содержания креатинина и показателей антиоксидантной защиты. В III группе снижены по сравнению со II группой количество продуктов перекисного окисления липидов, активность аланинаминотрансферазы, щелочной фосфатазы и уровень общего биллирубина. Заключили, что использование питьевой воды, обогащённой молекулярным водородом, удучшает показатели состава крови и антиоксидатного статуса у длиннохвостой шиншиллы с синдромом сечения меха в условиях клеточного содержания
Литература:
1. Лоенко Н.Н., Растимешина О.В., Кровина Е.В., Майоров А.И., Рапопорт О.Л. Морфофункциональное состояние тиреоидого статуса у молодняка норок (Neovison vison) в период смены волосяного покрова при коррекции йодной недостаточности. // Кролиководство и звероводство. 2019. № 4. С. 14-19.
2. Мантатова Н.В., Кладова Д.В. Сравнительная характеристика биохимических показателей крови пушных зверей при патологии «сечения» волосяного покрова. // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2019. № 11. С. 133-138.
3. Мантатова Н. В., Кладова Д. В. Сравнительная характеристика гематологических показателей крови пушных зверей семейства куньих при «сечении» волосяного покрова. // Роль аграрной науки в устойчивом развитии сельских территорий. Рязань, РГАУ: 2020. С. 509-513.
4. Молькова А.А., Ивонина О.Ю., Ивонин Ю.В., Рядинская Н.И. Проявление дефекта волосяного покрова “стрижка” у норок различных цветовых форм в ЗАО “Большереченское” Иркутской области. // Вестник Иркутской с-х. aкадемии. 2021. № 2. С. 5-7.
5. Ревякин И.М., Тихоновская И.В., Кузьмина О.А. «Стрижка» волосяного покрова у норок в контексте медицинской трихологии. // Учёные записки УО ВГАВМ. 2014. Т. 50, № 1. С. 132-133.
6. Ревякин И.М. Особенности диагностики и этиологии «стрижки» волосяного покрова норок. // Животноводство и ветеринарная медицина. 2015. № 1. С.43-47.
7. Baeeri M., Mohammadi-Nejad S., Rahimifard M. et al. Molecular and biochemical evidence on the protective role of ellagic acid and silybin against oxidative stress-induced cellular aging. // Mol. Cell. Biochem. 2018. Vol. 44. P. 21- 33.
8. Cui J. Inhalation of water electrolysis-derived hydrogen ameliorates cerebral ischemia-reperfusion injury in rats - a possible new hydrogen resource for clinical use. // Neuroscience. 2016. Vol. 335. P. 232-241. DOI: 10.1016/j.neuroscience.2016.08.021
9. Franchi Parra V.A., Aleuy O.A., Tadich Gallo T. Fur chewing and other abnormal repetitive behaviors in chinchillas (Chinchilla lanigera), under commercial fur-farming conditions. // J. Vet. Behav. 2016. Vol. 11. P. 60-64.
10. Fu J. Hydrogen molecules (H2) improve perfusion recovery via antioxidant effects in experimental peripheral arterial disease. // Mol. Med. Rep. 2018. Vol. 18. nr 6. P. 5009-5015.
11. Hancock J.T., LeBaron T.W., Russell G. Molecular hydrogen: redox reactions and possible biological interactions. // Reactive Oxygen Species. 2021. Vol. 11. P. 17-25. DOI: 10.20455/ros.2021.m.803
12. Hirayama M., Ito M., Minato T., Yoritaka A., LeBaron T., Ohno K. Inhalation of hydrogen gas elevates urinary 8-hydroxy-20 - deoxyguanine in Parkinson’s disease. // Med. Gas Res. 2018. Vol. 8. nr 4. P. 144-149. DOI: 10.4103/2045-9912.248264
13. Hong Li, Yaru Yin, Jing Liu, Binghui Lu, Huimin Wan, Luxun Yang, Weidong Wang, Rong Li Hydrogen-rich water attenuates the radiotoxicity induced by tritium exposure in vitro and in vivo. // J. Rad. Res. 2021. Vol. 62. nr 1. P. 34-45. DOI: 10.1093/jrr/rraa104
14. Ichihara M., Sobue S., Ito M., Ito M., Hirayama M., Ohno K. Beneficial biological effects and the underlying mechanisms of molecular hydrogen. Comprehensive review of 321 original articles. // Med. Gas Res. 2015. Vol. 5. P. 1-21. DOI: 10.1186/s13618-015-0035-1
15. Jafta N., Magagula S., Lebelo K., Nkokha D., Mochane M.J. The production and role of hydrogen-rich water in medical applications. // Applied Water Science. 2021. Vol. 1. DOI: 10.1002/9781119725237.ch10
16. Kura B., Bagchi A.K., Singal P.K., Barancik M., LeBaron T.W., Valachova K., Šoltés L., Slezák J. Molecular hydrogen: Potential in mitigating oxidative-stress-induced radiation injury. // Can. J. Physiol. Pharmacol. 2019. Vol. 97. nr 4. P. 287-292. DOI: 10.1139/cjpp-2018-0604
17. Lapinski S., Lis M.W., Wójcik A., Migdal L., Guja I. Analysis of factors increasing the probability of fur chewing in chinchilla (Chinchilla lanígera) raised under farm conditions. // Ann. Anim. 2014. Vol. 14. P. 189-195.
18. LeBaron T.W., Larson A.J., Ohta S., Mikami T., Barlow J., Bulloch J., DeBeliso M. Acute supplementation with molecular hydrogen benefits submaximal exercise indices. Randomized, double-blinded, placebo-controlled crossover pilot study. // J. Lifestyle Med. 2019. Vol. 9. nr 1. P. 36-43. DOI: 10.15280/jlm.2019.9.1.36
19. Lili Fan, Huayu Chen, Junhui Liang, Da Chen, Yuexiang Huang. Controllable synthesis of hydrogen bubbles via aeration method for efficient antioxidant process. // Applied Nanoscience. 2021. Vol. 11. P. 833-840.
20. Ohta S. Molecular hydrogen as a preventive and therapeutic medical gas: Initiation, development and potential of hydrogen medicine. // Pharmacol. Ther. 2014. Vol. 144. P. 1-11. DOI: 10.1016/j.pharmthera.2014.04.006
21. Panina E., Ivanov A., Petrov D. Influence of molecular hydrogen on behavioral adaptation of Сhinchilla lanigera taking into account gender factor in conditions of cage keeping. // BIO Web of Conferences. 2021. Vol. 36. DOI:10.1051/bioconf/20213607006
22. Panina E., Ivanov A., Petrov D. The condition of the hairline of Chinchilla lanigera after the introduction of a hydrogen antioxidant into the diet. // BIO Web of Conferences. 2021. Vol. 36. DOI: 10.1051/bioconf/2021360602
23. Panina E.V., Ivanov A.A., Petrov D.V., Panteleev S.V. Behavior of Chinchilla lanigera under cage keeping with the introduction of molecular hydrogen into the diet. // E3S Web of Conferences. 2021. Vol. 254. P. 08008.
24. Sato T., Mimuro S., Katoh T., Kurita T., Truong S.K., Kobayashi K., Makino H., Doi M., Nakajima Y. 1.2% Hydrogen gas inhalation protects the endothelial glycocalyx during hemorrhagic shock: a prospective laboratory study in rats. // J. Anesth. 2020. Vol. 34. P. 1-8. DOI: 10.1007/s00540-020-02737-3
25. Shao A., Wu H., Hong Y., Tu S., Sun X., Wu Q., et al. Hydrogen-rich saline attenuated subarachnoid hemorrhage-induced early brain injury in rats by suppressing inflammatory response: possible involvement of nf-kappa b pathway and nlrp3 inflammasome. // Molecular Neurobiology. 2015. Vol. 53. P. 3462-3476. DOI:10.1007/s12035-015-9242-y
26. Tamasawa A., Mochizuki K., Hariya N. et al. Hydrogen gas production is associated with reduced interleukin-1β mRNA in peripheral blood after a single dose of acarbose in Japanese type 2 diabetic patients. // Eur. J. Pharmacol. 2015. Vol. 762. P. 96-101. DOI: 10.1016/j.ejphar.2015.04.051
27. Tisljar M., Janic D., Grabarevic Z., Marinculic A., Pinter L., Janicki Z., Nemanic A. Stress induced cushing’s síndrome in fur chewing chinchillas. // Acta. Vet. Hung. 2002. Vol. 50. P.133-142.
28. Yang L., Li D.C., Chen S.Y. Hydrogen water reduces NSE, IL-6, and TNF-α levels in hypoxic-ischemic encephalopathy. // Open Med. 2016. Vol. 11 nr 1. P.399-406.
29. Zhang C.B., Tang Y.C., Xu X.J., Guo S.X. & Wang H.Z. Hydrogen gas inhalation protects against liver ischemia/reperfusion injury by activating the NF-kappa B signaling pathway // Exper. Therap. Med. 2015. Vol. 9. P. 2114-2120. DOI: 10.3892/etm.2015.2385
30. Zhang Y., Xu J., Long Z., Wang C., Wang L., Sun P., Li P., Wang T. Hydrogen (H2) inhibits isoproterenol-induced cardiac hypertrophy via antioxidative pathways. // Front. Pharmacol. 2016. Vol.7. P.1-12. DOI: 10.3389/fphar.2016.00392
31. Zhou P., Lin B., Wang P. et al. The healing effect of hydrogen-rich water on acute radiation-induced skin injury in rats. // J. Radiat. Res. 2019. Vol. 60. P. 17-22.