Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
1,2Остренко К.С., 1Овчарова А.Н., 1Волчёнков Ю.А.
1ВНИИ физиологии, биохимии и питания животных – филиал ФИЦ животноводства –
ВИЖ им. Л.К. Эрнста, Боровск Калужской обл., 2Московская государственная
академия ветеринарной медицины и биотехнологии – МВА имени К. И. Скрябина,
Москва, Российская Федерация
Актуальным направлением исследований по оптимизации протеинового питания телят молочного периода выращивания является применение кормовых добавок с целью повышение усвояемости азота корма и снижение потерь азота с мочевиной. Для исследования было сформировано две группы телят-молочников (n =10), которым скармливали заменитель цельного молока (ЗЦМ). С месячного возраста телятам в рацион вводили N-карбамилглутамат в дозе 20 мг/кг живой массы, добавляя его в ЗЦМ. Контрольная группа получала ЗЦМ в том же объёме. В конце опыта продолжительностью 60 суток в опытной группе выявлено повышение против контроля уровня в плазме крови общего белка, альбуминов, аргинина и триглицеролов (Р<0,05) на фоне снижения уровня мочевины, аммиака, дисульфидных групп и малонового диальдегида (P<0,05). Улучшение показателей, характеризующих тиол-дисульфидную и антиоксидантную системы, свидетельствует о повышении адаптационно-защитных функций и буферной емкости антиоксидантной системы у телят в опытной группе. У телят опытной группы прирост живой массы за весь период опыта был выше, чем в контроле (P<0,05). По совокупности зоотехнических и физиолого-биохимических показателей заключили о целесообразности применения кормовой добавки N-карбамилглутамата у телят в молочный период выращивания
1. Амиров Д.Р., Тамимдаров Б.Ф., Шагеева А.Р. Клиническая гематология животных. Rазань: Центр информационных технологий. КГАВМ, 2020. 134 с
2. Борознов С.Л. Использование пробиотиков и пребиотиков в лечении и профилактике болезней телят. // Учёные записки Витебской государственной академии ветеринарной медицины. 2008. Т. 44, вып. 1. С. 69-73.
3. Дубинин В.А., Федюшина С.С., Стрюков С.Н. Эффекты L-аргинина и его функционального антагониста N-нитро-L-аргинина на поведение. // Бюлл. эксперим. биологии и медицины. 1995. Т. 120, № 11. С. 465-468.
4. Зeмлянухинa Т.Н., Абрамов С.И. Использование комбикорма "калькосуперстарт" в рационе телят -молочников. // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2018. Т. 167. № 9. С. 87-92.
5. Иванова Л. И. Повышение сохранности телят. // Молочное и мясное скотоводство. 1986. № 5. С. 50-51.
6. Кузнецов А.С., Остренко К.С. Влияние аргинина на показатели роста поросят, эффективность утилизации аммиака и использование азота из рациона. Способы устранения дефицита аргинина. // Свиноводство. 2020. № 8. С. 45-47.
7. Кузнецов А.С., Остренко К.С. Повышение эффективности использования протеина рациона для высокопродуктивных коров. // Эффективное животноводство. 2020. Т. 166. № 9. С. 94-95.
8. Некрасов, Р.В. Головин А.В., Махаев Е.А. и др. Нормы потребностей молочного скота и свиней в питательных веществах. Федеральный научный центр животноводств- ВИЖ им. Л.К. Эрнста. Москва, 2018. 290 с.
9. Остренко К.С. Основы взаимосвязи нейрогуморальной регуляции и микробиома ЖКТ у овец. // Сб. трудов Краснодарского научного центра по зоотехнии и ветеринарии. 2021. Т. 10. № 1. С. 185-189.
10. Савельева К.В., Себенцова Е.А., Микоян В.Д. Предшественник оксида азота – L–аргинин – снижает болевую чувствительность крыс при пероральном введении. // Бюл. эксперим. биологии и медицины. 1997. Т. 124. № 11. С. 498-500.
11. Северьянова Л.А., Бобынцев И.И. Механизмы действия аминокислоты L-аргинина на нервную и иммунную регуляторные системы. // Курский научно-практический вестник «Человек и его здоровье». 2006. № 3. С.60-75.
12. Хавинсон В.Х., Кветной И.М., Ашмарин И.П. Пептидергическая регуляция гомеостаза. // Успехи соврем. биологии. 2002. Т. 122, № 2. С. 190-203.
13. Bassit R.A., Curi R., Costa Rosa L.F. Creatine supplementation reduces plasma levels of pro -inflammatory cytokines and PGE2 after a half-ironman competition. // Amino Acids. 2008. Vol. 35. P. 425-431.
14. Binion D.G., West G.A., Volk E.E., Drazba J.A., Ziats N.P., Petras R.E., Fiocchi C. Acquired increase in leucocyte binding by intestinal microvascular endothelium in inflammatory bowel disease. // Lancet. 1998. №. 352. Р. 1742-1746. DOI: 10.1016/S0140-6736(98)05050-8.
15. Brosnan J.T., Brosnan M.E. Creatine: endogenous metabolite, dietary, and therapeutic supplement. // Annu. Rev. Nutr. 2007. Vol. 27. P. 241-261.
16. Gao, K., Jiang, Z., Lin, Y., Zheng, C., Zhou, G., Chen, F., Yang, L., Wu, G., Dietary l-arginine supplementation enhances placental growth and reproductive performance in sows. Amino Acids. 2011, http://dx.doi.org/10.1007/s00726-011-0960-9.
17. Getahun D., Alemneh T., Akeberegn D., Getabalew M., Zewdie D. Urea metabolism and recycling in ruminants. // Biomed. J. Sci. Tech. Res. 2019. Vol. 20. nr 1. BJSTR. MS.ID.003401.
18. Goncalves L.C., Bessa A., Freitas-Dias R., et al,. A sportomics strategy to analyze the ability of arginine to modulate both ammonia and lymphocyte levels in blood after high-intensity exercise. // J. Int. Soc. Sports Nutr. 2012. Vol. 9. nr 1. P. 30-48.
19. Gualano B., Novaes R.B., Artioli G.G. Effects of creatine supplementation o n glucose tolerance and insulin sensitivity in sedentary healthy males undergoing aerobic training. // Amino Acids. 2008. Vol. 34. P. 245-250.
20. Hibbs J.B. Infection and nitric oxide // J. Infect. Dis.–2002. Vol. 185, Suppl. 1. S. 9-17.
21. Hristina K., Langerholc T., Trapecar M. Novel metabolic roles of L-arginine inbody energy metabolism and possible clinical applications. // J. Nutr., Health. Aging. 2014. Vol. 18. nr 2. P. 213-218.
22. Jin D., Zhao S., Wang P., Zheng N., Bu D., Beckers Y., Wang J. Insights into abundant rumen ureolytic bacterial community using rumen simulation system. // Front. Microbiol. 2006. 7: 1006. DOI: 10.3389/fmicb.2016.01006
23. Kim M., Morrison M., Yu Z. Status of the phylogenetic diversity census of ruminal microbiomes. // FEMS Microbiol. Ecol. 2011. Vol. 76. nr1: P. 49-63. DOI: 10.1111/j.1574-6941.2010.01029.x
24. Kwon H., Spencer T.E., Bazer F.W., Wu G. Developmental changes of amino acids in ovine fetal fluids. // Biol. Reprod. 2003. Vol. 68. P. 1813-1820.
25. Lemanske R.F. Inflammatory events in asthma: an expanding equation. // J. Allergy Clin. Immunol. 2000. Vol. 105, № 6 (Pt. 2). P. S633-S636.
26. Mateo, R.D., Wu, G., Moon, H.K., Carroll, J.A., Kim, S.W., 2008. Effects of dietary arginine supplementation during gestation and lactation on the performance of lactating primiparous sows and nursing piglets. // J. Anim. Sci. Vol. 86. P. 827-835.
27. Oba M., Baldwin R.L. Owens S.L., Bequette B.J. Metabolic fates of ammonia-N in ruminal epithelial and duodenal mucosal cells isolated from growing sheep. // J. Dairy Sci. 2005. Vol. 88. nr 11. P. 3963-3970. DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(05)73082-4
28. Raghavan S.A., Dikshit M., Vascular regulation by the l-arginine metabolites, nitric oxide and agmatine. // Pharmacol. Res. 2004. Vol. 49. P. 397-414.
29. Sacurada C., Sugiyama A., Nakayama M. Antinociceptive effect of spinally injected LNAME on the acute nociceptive response induced by low concentrations of formaline. // Neurochem. Int. 2001. Vol. 38, nr 4. P. 417-423.
30. Wu, G.Y., Bazer, F.W., Davis, T.A. et al. Arginine metabolism and nutrition in growth, health and disease. Amino Acids. 2009. Vol. 37. P. 15-168.
31. Zhang F.D., Wang J., Zhang H.J., Wu S.G., Lin J., Qi G.H. effect of amniotic injection of N-carbamylglutamate on meat quality of broilers. Animals (Basel). 2020. Vol. 10. nr 4. P. 576. DOI: 10.3390/ani10040576