Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
ВЛИЯНИЕ КОРМОВОЙ ДОБАВКИ N-КАРБАМОИЛГЛУТАМАТА НА СОСТОЯНИЕ АЗОТИСТОГО ОБМЕНА, ПРОДУКТИВНОСТЬ И ЗДОРОВЬЕ КОРОВ (обзор)
- Номер: 1
- Страницы: 5-20
Журнал: Проблемы биологии продуктивных животных
Аннотация:
Разработка новых технологий, которые могут повысить эффективность использования азота у жвачных животных, имеет большое значение для развития молочного сектора животноводства. Одним из таких перспективных решений является использование N-карбамоилглутамата (NКГ) в качестве кормовой добавки. NКГ - неметаболизируемый аналог N-ацетилглутамата, аллостерического активатора карбамоилфосфатсинтетазы на первой стадии цикла мочевины. NКГ менее подвержен разрушению рубцовой микрофлорой, что делает его более эффективным для жвачных животных, он не является антибиотиком, не оказывает отрицательного воздействия на микрофлору рубца. Фармакодинамические эффекты NКГ ограничены действием на цикл мочевины, он не обладает генотоксичностью и безопасен для животных и человека. Цель обзора – систематизация и обобщение результатов исследований по изучению физиологических механизмов действия и эффктивности кормовой добавки NКГ у животных. Основные разделы обзора: механизм действия NКГ; роль аргинина в метаболизме у жвачных; влияние NКГ на продуктивность и здоровье коров; эффекты применения NКГ у сухостойных коров; эффекты NКГ по снижению эмиссии аммиака в окружающую среду; практические аспекты применения добавки NКГ. Применение кормовой добавки NКГ улучшает метаболическое состояние коров за счёт снижения концентрации аммиака в крови и повышения синтеза аргинина в орнитиновом цикле. Повышение продукции аргинина и его метаболитов, в том числе оксида азота, способствует поддержанию репродуктивного здоровья, снижению заболеваемости и повышению продуктивности животных. Заключили о необходимости детальных исследований влияния добавок NКГ на продуктивно-хозяйственные признаки и физиолого-биохимические показатели у коров при разных условиях кормления и содержания.
Литература:
1. Александрович Ю.С., Пшениснов К.В., Фелькер Е.Ю., Абрамова Н.Н., Габрусская Т.В. Нарушения цикласинтеза мочевины как причина острой церебральной недостаточности у детей: случай из практики. // Вестник интенсивной терапии им. А. И.Салтанова. // 2017. №1. С. 73-79.
2. Ашихмин С.П., Мартусевич А.К., Жданова О.Б., Колосов А.Е. ред. Шешунов И.В. // Соединения азота в биомедицинских науках. М.: Издательский дом Академии Естествознания, 2012. 88 с.
3. Бажанов В.А., Орешко И.И. Мясное производство в России: проблемы импортозамещения. // Мир экономики и управления. 2015. Т. 15. № 3. С. 46-55.
4. Галочкин В.А., Галочкина В.П., Матвеев В.А., Харитонов Е.Л., Ушаков А.С. Методическое пособие по нормированию питания бычков при интенсивном выращивании и откорме. Боровск: ВНИИФБиП, 2013. 95 с.
5. Гусаров И.В., Фоменко П.А., Богатырева Е.В. О необходимости нормирования содержания мочевины в кормах для КРС. // Комбикорма. 2020. № 10. С. 56-58. DOI 10.25741/2413-287X-2020-10-3-123
6. Давыдова С.Ю. Азотсодержащие кормовые добавки в рационе жвачных (обзор). // Животноводство икормопроизводство. 2014. Т.84. № 1. С. 118-121.
7. Дегтярева А.В., Соколова Е.В., Захарова Е.Ю., Исаева М.Х., Высоких М.Ю., Иванец Т.Ю., Дегтярев Д.Н. Гипераммониемия в практике неонатолога. // Российский вестник перинатологии и педиатрии. 2020. Т. 65. C. 98-107.
8. Колоскова Е.М. Влияние добавки n-карбамоилглутамата на азотистый обмен и продуктивность у жвачных животных (обзор). // Проблемы биологии продуктивных животных, 2021. № 4. 51-61.
9. Калашников А.П., Фисинин В.И., Щеглов В.В., Клейменов Н.И. (Ред.). Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных животных. Москва. Издательство «Знание». 2003. 456 с
10. Кузнецов А.С., Остренко К.С. Повышение эффективности использования протеина рациона для высокопродуктивных коров. // Эффективное животноводство. 2020. Т. 166. № 9. С. 94-95.
11. Кузнецов А.С., Остренко К.С. Способы снижения концентрации аммиака в крови для повышения продуктивности коров. // Эффективное животноводство. 2021. T 167. № 1. С. 68-69.
12. Кузнецов А.С., Остренко К.С., Кузнецова Т.С. Влияние n-карбомилглутамата на утилизацию свободного аммиака в организме и молочную продуктивность коров. // Молочное и мясное скотоводство. 2022. № 1. С. 32-35.
13. Кузнецов А.С., Харитонов Е.Л., Остренко К.С. Влияние добавок n-карбомилглутамата в рацион на показатели рубцового пищеварения, утилизацию аммиака, метаболизм азота и молочную продуктивность коров. // Молочное и мясное скотоводство. 2021б. № 1. С. 29-32.
14. Кузнецов А.С., Харитонов Е.Л., Остренко К.С., Овчарова А.Н. Использование азотсодержащих соединений в организме молодняка крупного рогатого скота при добавлении в рацион n-карбомилглутамата. // Молочное и мясное скотоводство. 2021. № 2. С. 37-39.
15. Кузьмина Т.Н. Перспективы развития отечественного мясного скотоводства. Техника и технологии в животноводстве. 2019. Т. 34. № 2. С. 92-99.
16. Остренко К.С., Галочкина В.П., Кутьин И.В., Кольцов К.С., Гавриков А.С. Применение добавки n-карбамоилглутамата для активизации орнитинового цикла, связывания аммиака и продукции эндогенного аргинина у поросят сосунов. // Проблемы биологии продуктивных животных. 2022. № 4. С. 61-69.
17. Плотникова Е.Ю., Сухих А.С. Различные варианты гипераммониемии в клинической практике. // Медицинский совет. 2018. № 14. С. 34-42.
18. Украинцев С.Е. Некоторые аспекты белкового и жирового компонентов коровьего молока в питании детей раннего возраста. // Педиатрия. 2010. № 5. С 95-101.
19. Филиппова О.Б., Кийко Е.И., Маслова Н.И. Рубцовое пищеварение у коров при различном составе кормовой смеси. // Техника и технологии в животноводстве. 2017. Т. 28. № 4. С. 139-144. DOI: 10.24411/2226-4302-2017-00023.
20. Харитонов Е.Л., Остренко К.С., Лемешевский В.О. Профилактика нарушений рубцового пищеварения у растущих бычков молочных пород. // Ветеринария: научно-производственный журнал. 2020. № 9. С. 50-55. https://doi.org/10.30896/0042-4846.2020.23.9.50-55
21. Annen E.L., Collier R.J., McGuire M.A., Vicini J.L. Effects of dry period length on milk yield and mammary epithelial cells. J. Dairy Sci. 2004. 87(11): 3746-3761.
22. Bachman K.C. Milk production of dairy cows treated with estrogen at the onset of a short dry period. J. Dairy Sci. 2002. 85(4): 797-803.
23. Bauman D.E., Currie W.B. Partitioning of nutrients during pregnancy and lactation: a review of mechanisms involving homeostasis and homeorhesis. J. Dairy Sci. 1980. 63(9): 1514-1529. Biomed. J. Sci. Tech. Res. 2019. 20(1). BJSTR. MS.ID.003401.
24. Bobe G., Young J.W., Beitz D.C. Pathology, etiology, prevention, and treatment of fatty liver in dairy cows. J. Dairy Sci. 200. 487(10): 3105-3124.
25. Cai S, Zhu J, Zeng X, Ye Q, Ye C, Mao X, Zhang S, Qiao S, Zeng X. Maternal N-carbamylglutamate supply during early pregnancy enhanced pregnancy outcomes in sows through modulations of targeted genes and metabolism pathways. J. Agric. Food Chem. 2018. 66(23): 5845-5852. doi: 10.1021/acs.jafc.8b01637.
26. Caldovic L., Morizono H., Daikhin Y., Nissim I., McCarter R. J., Yudkoff M., Tuchman M. Restoration of ureagenesis in N-acetylglutamate synthase deficiency by N-carbamylglutamate. J. Pediat. 2004. 145(4): 552-554. DOI: 10.1016/j.jpeds.2004.06.047
27. Caldovic L., Morizono H., Panglao M. ., Cheng S. ., Packman S., Tuchman M. Null mutations in the N- acetylglutamate synthase gene associated with acute neonatal disease and hyperammonemia. Human genetics. 2003. 112(4): 364-368. DOI: 10.1007/s00439-003-0909-5
28. Caldovic L., Tuchman, M. N-acetylglutamate and its changing role through evolution. Biochtm. J. 2003. 372: 279-290.
29. Calsamiglia S., Ferret A., Reynolds C.K., Kristensen N.B., Van Vuuren A.M. Strategies for optimizing nitrogen use by ruminants. Animal. 2010. 4: 1184. doi: 10.1017/S1751731110000911
30. Capper J.L., Cady R.A., Bauman D.E. The environmental impact of dairy production: 1944 compared with 2007. J. Anim. Sci, 2009. 87(6): 2160-2167.
31. Capuco A.V., Akers R.M., Smith J.J. Mammary involution in dairy cows: morphological and biochemical characterization. J. Dairy Sci, 2001. 84(5): 952-964.
32. Chacher B., Zhu W., Ye J.A., Wang D.M., Liu J.X. Effect of dietary N-carbamoylglutamate on milk production and nitrogen utilization in high-yielding dairy cows. J. Dairy Sci. 2014. 97: 2338-2345. doi: 10.3168/jds.2013-7330
33. Chacher B., Wang D.M., Liu H.Y., Liu J.X. Degradaton of L-arginine and N-carbamoyl glutamate and their effect on rumen fermentaton in vitro. Ital. J. Anim. Sci. 2012. 11: 4693-4696.
34. Chacher B., Zhu W., Ye J.A., Wang D.M., Liu J.X.. Effect of dietary N-carbamoylglutamate on milk production and nitrogen utilization in high-yielding dairy cows. J. Dairy Sci. 2014. 97(4): 2338-2345. DOI: 10.3168/jds.2013- 7330
35. Chacher, B., Liu, H., Wang, D., Liu, J., Shi, J. The effect of N-carbamylglutamate on nitrogen utilization in ruminants: a review. Anim. Feed Sci. Techn. 2014. 198: 251-259.
36. Chacher B., Wu Z., Wang Z., Liu J. Dietary supplementation of N-carbamylglutamate increases milk production and nitrogen efficiency in lactating dairy cows. J. Dairy Sci. 2012. 95(1): 192-200.
37. Chung Y. H., Pickett M.M., Cassidy T.W., Varga G.A. Effects of added sugar and glycerol on production and metabolic profiles of transition dairy cows. J. Dairy Sci. 2007. 90(11): 5682-5691.
38. Daniotti J.L., Medina M.I. Effects of N-carbamylglutamate on ammonia detoxication in mammals. J. Clin. Exper. Hepat. 2011. 1(1): 49-55.
39. Daniotti M., la Marca G., Fiorini P., Filippi L. New developments in the treatment of hyperammonemia: emerging use of carglumic acid. Int. J. Gener. Med. 2011. 4: 21-28.
40. Drackley J.K. Biology of dairy cows during the transition period: the final frontier? J. Dairy Sci. 1999. 82(11): 2259-2273.
41. Duffield T.F. Subclinical ketosis in lactating dairy cattle. Vet. Clin. North Amer.: Food Anim. Pract. 2000. 16(2): 231-253.
42. Feng T., DeVore A.A., Perego M.C., Morrell B.C., Spicer L.J. Effects of N-carbamylglutamate and arginine on steroidogenesis and proliferation of pig granulosa cells in vitro. Anim. Reprod. Sci. 2019. 209: 106-138. doi: 10.1016/j.anireprosci.2019.106138.
43. Feng T., Schütz L.F., Morrell B.C., Perego M.C., Spicer L.J. Effects of N-carbamylglutamate and L-arginine on steroidogenesis and gene expression in bovine granulosa cells. Anim. Reprod. Sci. 2018. 188: 85-92. doi: 10.1016/j.anireprosci.2017.11.012.
44. Frank J.W., Escobar J., Nguyen H.V., Jobgen S.C., Jobgen W.S., Davis T.A., Wu G. Oral N-carbamylglutamate supplementation increases protein synthesis in skeletal muscle of piglets. J. Nutr. 2007. 137: 315-319. doi: 10.1093/jn/137.2.315
45. Goff J.P., Horst R.L. Physiological changes at parturition and their relationship to metabolic disorders. J. Dairy Sci.1997. 80(7): 1260-1268.
46. Grummer R.R. Impact of changes in organic nutrient metabolism on feeding the transition dairy cow. J. Anim. Sci. 1995. 73(9): 2820-2833.
47. Gu F.F., Wang D.M., Yang D.T., Liu J.X., Ren D.X. Short communication: Effects of dietary N-carbamoylglutamate supplementation on the milk amino acid profile and mozzarella cheese quality in mid-lactating dairy cows. J. Dairy Sci. 2020. 103: 4935-4940. doi: 10.3168/jds.2019-17385.
48. Gu X., Zhang R., Shi B., Ding C. Effects of N-carbamylglutamate on lactation performance and amino acid metabolism in mid-lactation dairy cows. J. Dairy Sci. 2018, 101(2): 1049-1059.
49. Gu, L., Liu, J., Xing, S., Wei, Y., Wang, L., Wang, C. Effects of N-carbamylglutamate on lactation performance, nitrogen utilization, and blood metabolites in mid-lactating dairy cows. J. Dairy Sci. 2018. 101(6), 5536-5544.
50. Harper A.E., Benevenga N.J., Wohlhueter R.M. Effects of ingestion of single amino acids. Ann. Rev. Nutr. 2009. 4(1): 409-454.
51. Harper M.S., Amanda Shen Z., Barnett J.F., Krsmanovic L., Myhre A., Delaney B. N-Acetyl-glutamic acid: evaluation of acute and 28-day repeated dose oral toxicity and genotoxicity. Food Chem. Toxicol. 2009. 47(11): 2723-2729. DOI:10.1016/j.fct.2009.07.036
52. Hartman J.W., Tang J.E. Consumption of fat-free fluid milk after resistance exercise promotes greater lean mass accretion than does consumption of soy or carbohydrate in young, novice, male weightlifters. Am. J. Clin. Nutr. 2007, 86(2), 373-381.
53. Heaney R.P. Calcium, dairy products and osteoporosis. J. Am. Coll. Nutr. 2000. 19(2): 83S-99S.
54. Hsiao C.T., Wang P.W., Chang H.C. et al. Advancing a high throughput glycotope-centric glycomics workflow based on nanol C-MS2-product dependent-MS3 analysis of permethylated glycans. Mol. Cell Proteom. 2017. 16(12): 2268-2280. doi: 10.1074/mcp.TIR117.000156. Epub 2017 Oct 24. PMID: 29066631; PMCID: PMC5724186.
55. Huhtanen P., Hristov A.N. A meta-analysis of the effects of dietary protein concentration and degradability on milk protein yield and milk n efficiency in dairy cows. J. Dairy Sci. 2009. 92: 3222-3232.
56. Ingvartsen K.L., Andersen J.B. Integration of metabolism and intake regulation: A review focusing on periparturient animals. J. Dairy Sci. 2000. 83(7): 1573-1597.
57. Jobgen W.S. et al. Regulatory role for the arginine-nitric oxide pathway in metabolism of energy substrates. J. Nutr. Biochem. 2006. 17(9): 571-588.
58. Kiykim A., Zubarioglu T. Clinical utility of N-carbamylglutamate in urea cycle disorders. Therap. Clin. Risk Manag. 2014. 10: 389-399.
59. Kiykim E., Zubarioglu T. Low dose of carglumic acid for treatment of hyperammonemia due to N-acetylglutamate synthase deficiency. Ind. Pediatr. 2014. 51(9): 755-756.
60. Knapp J.R., Laur G.L., Vadas P.A., Weiss, W.P., Tricarico J.M. Invited review: Enteric methane in dairy cattle production: Quantifying the opportunities and impact of reducing emissions. J. Dairy Sci. 2014. 97(6): 3231-3261.
61. LeBlanc S.J. Monitoring metabolic health of dairy cattle in the transition period. J. Reprod. Devel., 2010. 56: S29-S35.
62. Li P, Wu G. Important roles of amino acids in immune responses. Brit. J. Nutr. 2022. 127(3): 398-402. doi:10.1017/S0007114521004566
63. Li Z., Mu C., Xu Y., Shen J., Zhu W. Changes in the solid-, liquid-, and epithelium-associated bacterial communities in the rumen of lambs in response to dietary urea supplementation. Front. Microb. 2020. 11: 244-252.
64. Logue J.B., Burgmann H., Robinson C.T. Progress in the ecological genetics and biodiversity of freshwater bacteria. BioScience. 2008. 58(2): 103-113.
65. Mallard B.A., Dekkers J. C. et al. Alteration in immune responsiveness during the peripartum period and its ramification on dairy cow and calf health. J. Dairy Sci. 1998. 81(2), 585-595.
66. Meijer A.J., Lof C., Ramos I.C., Verhoeven A.J. Control of ureogenesis. Eur. J. Biochem. 1985. 148(1): 189-196.
67. Meijer G. A. L., van der Meulen J., van Vuuren, A.M. Glucose and amino acids metabolism in the mammary gland of ruminants. Livest. Prod. Sci. 1995. 44(2): 107-115.
68. Morizono H., Caldovic L., Shi D., Tuchman M. Mammalian N-acetylglutamate synthase. Mol. Genet. Metab. 2004. 81(1): 4-11. DOI: 10.1016/j.ymgme.2003
69. Morizono H., Caldovic L., Tuchman, M., Malamy M.H. N-carbamylglutamate, a functional analog of N-acetylglutamate in the regulation of mammalian carbamoyl-phosphate synthetase I. FEBS Letters, 2004 569(1-3): 171-175.
70. Morrow D.A. Fat cow syndrome. J. Dairy Sci. 1976. 59(9): 1625-1629. DOI: 10.21508/1027–4065–2020–65–6–98–107
71. Oba M., Baldwin R.L, Owens S.L., Bequette B.J. Urea synthesis by ruminal epithelial and duodenal mucosal cells from growing sheep. J. Dairy Sci. 2004. 87(6): 1803-1805. DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(04)73336-6
72. Oba M., Baldwin R.L. Owens S.L., Bequette B.J. Metabolic fates of ammonia-N in ruminal epithelial and duodenal mucosal cells isolated from growing sheep. J. Dairy Sci. 2005. 88(11): 3963-3970. DOI: 10.3168/jds.S0022- 0302(05)73082-4
73. Overton T.R., Waldron M.R. Nutritional management of transition dairy cows: strategies to optimize metabolic health. J. Dairy Sci. 2004. 87(E. Suppl.), E105-E119.
74. Palencia J.Y.P., Lemes M.A.G., Garbossa C.A.P., Abreu M.L.T., Pereira L.J., Zangeronimo M.G. Arginine for gestating sows and foetal development: a systematic review. J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. 2017. 102(1): 204- 213.
75. Palencia J.Y.P., Saraiva A., Abreu M.L.T., Zangeronimo M.G., Schinckel A.P., Pospissil Garbossa C.A. Effectiveness of citrulline and N-carbamoyl glutamate as arginine precursors on reproductive performance in mammals: A systematic review. PLoS ONE. 2018. 13(12): e0209569. DOI: org/10.1371/journal.pone.0209569
76. Santos J.E., Juchem, S.O., Cerri R.L., Galvao K.N., Chebel R.C., Thatche, W.W. Effect of bST and reproductive management on reproductive performance of Holstein dairy cows. J. Dairy Sci, 2004. 87(5), 868-881.
77. Sorensen J. T., Enevoldsen C. Effect of dry period length on milk production in subsequent lactation. J. Dairy Sci. 1991. 74(5), 1535-154
78. Summers M., Calvert C. C., Baldwin R. L. Impacts of rumen ammonia and total volatile fatty acids concentrations on growth and metabolism of rumen epithelium in vitro. J. Dairy Sci. 1988. 71(1), 271-278.
79. Sun L., Zhang H., Fan Y., Guo Y., Zhang G., Nie H., Wang F. Metabolomic profiling in umbilical venous plasma reveals effects of dietary rumen-protected arginine or N-carbamylglutamate supplementation in nutrient-restricted Hu sheep during pregnancy. Reprod. Domest. Anim. 2017. 52(3): 376-388. DOI: 10.1111/rda.12919
80. 106. Sun L., Zhang H., Wang Z., Fan Y., Guo Y., Wang F. Dietary rumen-protected arginine and N- carbamylglutamate supplementation enhances fetal growth in underfed ewes. Reprod. Fertil. Dev. 2018. 30(8): 1116-1127. DOI: 10.1071/RD17164
81. Ungerfeld E.M., Aedo M.F., Emilio D.M., Saldivia M. Inhibiting methanogenesis in rumen batch cultures did not increase the recovery of metabolic hydrogen in microbial amino acids. Microorganisms. 2019. 7(1): 15. DOI: 10.3390/microorganisms7050115
82. Van Knegsel A. T., Van den Brand H., Dijkstra, J., Tamminga S., Kemp B. Effect of dietary energy source on energy balance, production, metabolic disorders and reproduction in lactating dairy cattle. Reprod. Dom. Anim. 2007. 42(4), 320-327.
83. Visser N., Bevers M.M. Role of nitric oxide in ovarian function. Hum. Reprod. Update, 2000. 6(6), 533-541.
84. Wang S, Azarfar A, Wang Y, Cao Z, Li S. N-carbamylglutamate restores nitric oxide synthesis and attenuates high altitude-induced pulmonary hypertension in Holstein heifers ascended to high altitude. J Anim Sci Biotechnol. 2018 Sep 3; 9: 63. doi: 10.1186/s40104-018-0277-6. PMID: 30186602; PMCID: PMC6120069.
85. Wang Y., Han S., Zhou J., Li P., Wang G., Yu H., Cai S, Zeng X., Johnston L.J., Levesque C.L., Qiao S. Effects of dietary crude protein level and N-carbamylglutamate supplementation on nutrient digestibility and digestive enzyme activity of jejunum in growing pigs. J. Anim. Sci. 2020. 98. Р. 88-96. doi: 10.1093/jas/skaa088.
86. White H.M. The role of TCA cycle anaplerosis in ketogenesis and the synthesis of milk constituents in the lactating dairy cow. Animals, 2015. 5(3), 793-802.
87. Wu G., Bazer F.W., Davis T.A. et al. Arginine metabolism and nutrition in growth, health and disease. Amino Acids. 2009. 37(1):153-68. doi: 10.1007/s00726-008-0210-y. Epub 2008 Nov 23. PMID: 19030957; PMCID: PMC2677116.
88. Wu G., Bazer F.W., Cudd T.A., Meininger C.J., Spencer T.E. Maternal nutrition and fetal development..
89. Wu G., Bazer F.W., Davis T.A., Kim S.W., Li P., Rhoads J.M. et al. Arginine metabolism and nutrition in growth, health and disease. J. Amino Acids. 2009. 37: 153-168.
90. Wu G., Bazer F.W., Satterfield M.C., Li X., Wang X., Johnson G.A., et al. Impacts of arginine nutrition on embryonic and fetal development in mammals. J. Amino Acids. 2013. 45: 241-256.
91. Wu X., Zhang Y., Liu Z., Li T.J., Yin Y.L. Effects of oral supplementation with glutamate or combination of glutamate and N-carbamylglutamate on intestinal mucosa morphology and epithelium cell proliferation in weanling piglets. J. Anim. Sci. 2012. 90(4): 337-339. DOI: 10.2527/jas.53752
92. Wu Z., Hou Y., Hu S., Bazer F.W., Meininger C.J., McNeal C.J. et al. Catabolism and safety of supplemental l-arginineinanimals. J. Amino Acids. 2016. 48: 1541-1552.
93. Xing Y., Wu X., Xie C., Xiao D., Zhang B. Meat quality and fatty acid profiles of chinese ningxiang pigs following supplementation with N-Carbamylglutamate. Animals (Basel). 2020. 10(1): 88. DOI: 10.3390/ani10010088
94. Ye C., Zeng X., Zhu J., Liu Y., Ye Q., Qiao S., Zeng X. dietary n-carbamylglutamate supplementation in a reduced protein diet affects carcass traits and the profile of muscle amino acids and fatty acids in finishing pigs. J. Agric. Food Chem. 2017. 65(28): 5751-5758. DOI: 10.1021/acs.jafc.7b02301
95. Zhang F.D., Wang J., Zhang H.J., Wu S.G., Lin J., Qi G.H. effect of amniotic injection of N- carbamylglutamate on meat quality of broilers. Animals (Basel). 2020. 10(4): 576. DOI: 10.3390/ani10040576
96. Zhang H., Sun L.W., Wang Z.Y., Deng M.T., Zhang G.M., Guo R.H., Ma T.W., Wang F. Dietary N- carbamylglutamate and rumen-protected -arginine supplementation ameliorate fetal growth restriction in undernourished ewes. J. Anim. Sci. 2016. 94(5): 2072-2085. DOI: 10.2527/jas.2015-9587
97. Zhang H., Zhao F., Nie H., Ma T., Wang Z., Wang F., Loor J.J. Dietary N-carbamylglutamate and rumen-protected L-arginine supplementation during intrauterine growth restriction in undernourished ewes improve fetal thymus development and immune function. Reprod. Fertil. Dev. 2018. 30(1): 1522-1531. DOI: 10.1071/RD18047