Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
ВЛИЯНИЕ КОРМОВОЙ ДОБАВКИ N-КАРБАМИЛГЛУТАМАТА НА МОЧЕВИНООБРАЗОВАНИЕ, СИНТЕЗ АРГИНИНА И УДОИ МОЛОКА У ВЫСОКОПРОДУКТИВНЫХ КОРОВ
- Номер: 4
- Страницы: 77-84
Журнал: Проблемы биологии продуктивных животных
Аннотация:
Актуальной задачей в животноводстве является оптимизация протеинового питания жвачных животных путём создания условий для эффективного использования азотистых компонентов корма. Цель исследования – оценка влияния добавки N-карбамилглутамата (NКГ) – синтетического аналога N-ацетилглутамата в качестве активатора синтеза аргинина у высокопродуктивных коров. Было сформировано две группы коров черно-пёстрой голштинизированной породы (n=10) во второй половине лактации. Опытная группа получала основной рацион (обменная энергия 244 МДж, сухое вещество 21,7 кг, сырой протеин 3213 г, расщепляемый протеин 1947 г, нерасщепляемый протеин, 1266 г, переваримый сырой протеин 2490 г) с добавкой NКГ в дозе 20 г/гол/сут постоянно на протяжении 30 дней. Контрольная группа получала основной рацион в том же объёме. Среднесуточный удой молока в опытной группе был выше, чем в контрольной (Р<0.05) на протяжении двух месяцев от начала опыта. Уровень общего белка и аргинина в сыворотке крови в опытной группе был выше, чем в контрольной, на протяжении эксперимента. Выявлено снижение уровня аммиака и мочевины в сыворотке крови в опытной группе, по сравнению с контролем (Р<0.05), на двух сроках исследования (14 и 30 дней от начала опыта) на фоне повышенного уроня общего белка в сыворотке крови (Р<0.05). Заключили, что выявленное снижение уровня аммиака и мочевины на фоне повышения концентрации аргинина и общего белка в крови при использовании добавки NКГ свидетельствует о метаболической утилизации эндогенного аммиака у высокопродуктивных коров
Литература:
1. Борознов С.Л. Использование пробиотиков и пребиотиков в лечении и профилактике болезней телят. // Учёные записки Витебской государственной академии ветеринарной медицины. 2008. Т. 44. вып. 1. С. 69-73.
2. Зeмлянухинa Т.Н., Абрамов С.И. Использование комбикорма "калькосуперстарт" в рационе телят-молочников. // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. 2018. № 9. С. 87-92.
3. Ильина Л., Балакирева А., Йылдырым Е., Лаптев Г., Изучение бактериального сообщества рубца коров с помощью T-RFLP-анализа. // Молочное и мясное скотоводство. 2011. № 2. С. 24-27.
4. Кузнецов А.С., Остренко К.С., Кузнецова Т.С. Влияние n-карбамилглутамата на утилизацию свободного аммиака в организме и молочную продуктивность коров. // Молочное и мясное скотоводство. 2022. № 1. С. 32-35.
5. Кузнецов А.С., Остренко К.С. Повышение эффективности использования протеина рациона для высокопродуктивных коров. // Эффективное животноводство. .2020. №. 9. С. 94-95.
6. Кузнецов А.С., Харитонов Е.Л., Остренко К.С., Овчарова А.Н. Использование азотсодержащих соединений в организме молодняка крупного рогатого скота при добавлении в рацион n-карбомилглутамата. // Молочное и мясное скотоводство. 2021. № 2. С. 37-39.
7. Кузнецов А.С., Остренко К.С. Способы снижения концентрации аммиака в крови для повышения продуктивности коров. // Эффективное животноводство. 2021. № 1. С. 68-69.
8. Лемешевский В.О. , Харитонов Е.Л. , Остренко К.С. , Черепанов Г Г. Физиологические и продуктинвные эффекты обработки пропионовой кислотой размолого зерна гороха для защиты от распада в рубце у выращиваемых бычков. // Проблемы биологии продуктивных животных. 2020. № 4. С. 82-91. https://doi.org/10.25687/1996-6733.prodanimbiol.2020.4:82-91
9. Лемешевский В.О., Остренко К.С. Влияние "защищённой" энерго-протеиновой добавки в рационе на эффективность использования питательных веществ у бычков чёрнопёстрой породы в период откорма. // Проблемы биологии продуктивных животных. 2021. № 2. С. 92-102.
10. Остренко К.С., Галочкина В.П., Кутьин И.В., Кольцов К.С., Гавриков А.С. Применение добавки n-карбамоилглутамата для активизации орнитинового цикла, связывания аммиака и продукции эндогенного аргинина у поросят сосунов. // Проблемы биологии продуктивных животных. 2022. № 4. С. 61-69.
11. Остренко К.С.Проблемы интенсификации животноводства и пути их решения // В сборнике: Молодые ученые - науке и практике АПК. // Материалы научно-практической конференции аспирантов и молодых учёных.. Витебск, 2023. С. 162-164.
12. Равин Н.В., Марданов А.В., Скрябин К.Г. Метагеномика как инструмент изучения “некультивируемых” микроорганизмов. // Генетика. 2015. Т. 51. № 5. С. 519-528.
13. Харитонов Е.Л., Остренко К.С., Лемешевский В.О. Профилактика нарушений рубцового пищеварения у растущих бычков молочных пород. // Ветеринария: научно-производственный журнал. 2020. № 9. С. 50-55. https://doi.org/10.30896/0042-4846.2020.23.9.50-55
14. Cai S, Zhu J, Zeng X, Ye Q, Ye C, Mao X, Zhang S, Qiao S, Zeng X. Maternal N-сarbamylglutamate supply during early pregnancy enhanced pregnancy outcomes in sows through modulations of targeted genes and metabolism pathways. // J. Agric. Food Chem. 2018, Vol. 66. nr 23. P. 5845-5852. DOI: 10.1021/acs.jafc.8b01637.
15. Chacher B, Zhu W, Ye JA, Wang DM, Liu JX. Effect of dietary N-carbamoylglutamate on milk production and nitrogen utilization in high-yielding dairy cows.J Dairy Sci. 2014; №97. Р.2338-45. doi: 10.3168/jds.2013-7330
16. Cherepanov G., Kharitonov E., Ostrenko K. In silico predictions on the productive life span and theory of its developmental origin in dairy cows. // Animals. 2022. Vol. 12. nr 6. P. 684-698.
17. Feng T., DeVore A.A., Perego M.C., Morrell B.C., Spicer L.J. Effects of N-carbamylglutamate and arginine on steroidogenesis and proliferation of pig granulosa cells in vitro. // Anim. Reprod. Sci. 2019. Vol. 209. Р. 106-138. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2019.106138
18. Feng T., Schütz L.F., Morrell B.C., Perego M.C., Spicer L.J. Effects of N-carbamylglutamate and L-arginine on steroidogenesis and gene expression in bovine granulosa cells. // Anim. Reprod. Sci. 2018. Vol. 188. Р. 85-92. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2017.11.012
19. Frank J.W., Escobar J., Nguyen H.V., Jobgen S.C., Jobgen W.S., Davis T.A., Wu G. Oral N-carbamylglutamate supplementation increases protein synthesis in skeletal muscle of piglets. // J. Nutr. 2007. Vol. 137. Р. 315-319. DOI: 10.1093/jn/137.2.315
20. Gu F.F., Wang D.M., Yang D.T., Liu J.X., Ren D.X. Effects of dietary N-carbamoylglutamate supplementation on the milk amino acid profile and mozzarella cheese quality in mid-lactating dairy cows. // J. Dairy Sci. 2020. Vol. 103. Р.4935-4940. DOI: 10.3168/jds.2019-17385
21. Jin D., Zhao S., Wang P., Zheng N., Bu D., Beckers Y., Wang J. Insights into abundant rumen ureolytic bacterial community using rumen simulation system. // Front. Microbiol. 2016. Vol. 7. Р. 1006-1015. DOI: 10.3389/fmicb.2016.01006.
22. Kim M., Morrison M., Yu Z.. Status of the phylogenetic diversity census of ruminal microbiomes. // Microbiol. Ecol. 2011. Vol. 76. Р.49-63. DOI: 10.1111/j.1574-6941.2010.01029.x.
23. Logue J.B., Burgmann H., Robinson C.T. Progress in the ecological genetics and biodiversity of freshwater bacteria. // Bio. Science. 2008. Vol. 58. P. 103-113.
24. Oba M., Baldwin R.L., Owens S.L., Bequette BJ. Metabolic fates of ammonia-N in ruminal epithelial and duodenal mucosal cells isolated from growing sheep. // J. Dairy Sci. 2005. Vol. 88. Р. 3963-3970. DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(05)73082-4
25. Schütte U.M. E., Abdo Z., Bent S.J., Shyu C. Advance s in the use of terminal restriction fragment length polymorphism (T-RFLP) analysis of 16S rRNA genes to characterize microbial communities. // Appl. Microbiol. Biotechnol. 2008. Vol. 80. P. 365-380
26. Sun L., Zhang H., Fan Y., Guo Y., Zhang G., Nie H., Wang F.Metabolomic profiling in umbilical venous plasma reveals effects of dietary rumen-protected arginine or N-carbamylglutamate supplementation in nutrient-restricted Hu sheep during pregnancy. // Reprod. Domest. Anim. 2017. Vol. 52. Р. 376-388. DOI: 10.1111/rda.12919
27. Wang Y., Han S., Zhou J., Li P., Wang G., Yu H., Cai S, Zeng X., Johnston L.J., Levesque C.L., Qiao S. Effects of dietary crude protein level and N-carbamylglutamate supplementation on nutrient digestibility and digestive enzyme activity of jejunum in growing pigs. // J. Anim. Sci. 2020. Vol. 98. Р. 88-96. DOI: 10.1093/jas/skaa088
28. Wu X., Zhang Y., Liu Z., Li T.J., Yin Y.L. Effects of oral supplementation with glutamate or combination of glutamate and N-carbamylglutamate on intestinal mucosa morphology and epithelium cell proliferation in weanling piglets. // J. Anim. Sci. 2012. Vol. 90. Р. 337-3399. DOI: 10.2527/jas.53752
29. Xing Y., Wu X., Xie C., Xiao D., Zhang B. Meat quality and fatty acid profiles of chinese ningxiang pigs following supplementation with n-carbamylglutamate. // Animals. 2020. Vol. 10. Р.88-96. DOI: 10.3390/ani10010088
30. Zeng X., Zhu J., Liu Y., Ye Q., Qiao S., Zeng X. Dietary N-Carbamylglutamate supplementation in a reduced protein diet affects carcass traits and the profile of muscle amino acids and fatty acids in finishing pigs. // J. Agric. Food Chem. 2017. Vol. 19. Р. 5751-5758. DOI: 10.1021/acs.jafc.7b02301
31. Zhang F.D., Wang J., Zhang H.J., Wu S.G., Lin J., Qi G.H. Effect of amniotic injection of n-carbamylglutamate on meat quality of broilers. // Animals. 2020. Vol. 10. Р. 576-592. DOI: 10.3390/ani10040576
32. Zhang H., Zhao F., Nie H., Ma T., Wang Z., Wang F., Loor J.J. Dietary N-carbamylglutamate and rumen-protected L-arginine supplementation during intrauterine growth restriction in undernourished ewes improve fetal thymus development and immune function. // Reprod. Fertil. Dev. 2018. Vol. 30. Р.1522-1531. DOI: 10.1071/RD18047.