Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
ВЛИЯНИЕ ДОБАВОК ГЕПАТОПРОТЕКТОРНЫХ СРЕДСТВ НА МОРФОФУНКЦИОНАЛЬНОЕ СОСТОЯНИЕ ПЕЧЕНИ И КОРМОВОЕ ПОВЕДЕНИЕ У ЦЫПЛЯТ
- Номер: 3
- Страницы: 58-67
Журнал: Проблемы биологии продуктивных животных
Аннотация:
Цель исследования – изучение функции печени у 2,5-мес. яичных цыплят и особенностей их поведения после перемещения из условий промышленного выращивания в условия лаборатории. В опыте использовано 39 цыплят яичного кросса Декалб, из которых было сформировано 3 группы (n=13). Молодняку опытных групп в поилки в течение 30 дней добавляли препараты, обладающие гепатопротекторными свойствами: экстракт плодов расторопши пятнистой, солянки холмовой и репешка лекарственного в равном соотношении в общем количестве 0,3 г/кг ЖМ/сутки или рибоксин (инозин) в дозе 0,01 г/кг ЖМ/сутки; в контрольной группе цыплята получали воду без препаратов в общем количестве 0,3 г/кг ЖМ/сутки. В возрасте 2,5 и 3,5 мес. проводили исследование клеточного и биохимического состава крови (n=10) и брали образцы печени для гистологического исследования (n=3). В конце опыта сделана видеозапись поведения молодняка. У приобретённых цыплят по данным анализа крови, патологоанатомического исследования тушек и гистологического исследования печени установлена субклиническая стадия гепатита с признаками жирового перерождения гепатоцитов. В ткани печени цыплят, выращенных на птицефабрике, выявлено увеличение просвета центральных и портальных вен, расширение капиллярного русла, в портальных трактах – скопления лейкоцитарного инфильтрата с формированием фолликулов в 1 и 2 зонах ацинусов. В опытных группах выявлено улучшение показателей крови и архитектоники ткани печени, в сравнении с контролем. В конце опыта установлено улучшение кормового поведения цыплят опытных групп. Заключили о положительном влиянии добавок исследованных гепатопротекторных средств на кормовое поведение и функциональное состояние печени у цыплят, выращенных в условиях птицефабрики.
Литература:
1. Василенко Ю.К., Скульте И.В., Сергеева Е.О., Потапова А.А., Додохова М.А. Сравнительная оценка метаболических свойств рибоксина и глицирама. // Современные проблемы науки и образования. 2017. № 4. С. 1-8.
2. Васякина К.А., Куркина А.В. Репешок аптечный – перспективный сырьевой растительный источник гепатопротекторов. // Известия Самарского научного центра Российской академии наук. 2012. № 9. С. 2184-2186.
3. Курманова Е.Н., Стрелкова Л.Б., Ферубко Е.В., Шейченко О.П. Гепатозащитное действие экстракта репешка обыкновенного при экспериментальном тетрахлорметановом гепатит. // Вопросы биологической, медицинской и фармацевтической химии. 2020. № 23. С. 37-41.
4. Нуралиев Е.Р., Кочиш И.И. Производственные опыты по изучению мер борьбы и профилактики каннибализма кур в промышленном птицеводстве. // Известия Оренбургского государственного аграрного университета. 2017. №3. С. 117-120.
5. Садовников Н.В., Придыбайло Н.Д., Верещак Н.А. Заслонов А.С. Общие и специальные методы исследования крови птиц промышленных кроссов. Екатеринбург. СПб.: Уральская ГСХА, научно-производственное предприятие АВИВАК. 2009. 85 с.
6. Фаткуллин Р.Р., Сакен А.К. Внешняя среда птиц как фактор иммунобиохимических условий. // Самарский научный вестник. 2020. № 3. С. 152-157.
7. Abd El-Hack M.E., Samak D.H., Noreldin A.E., El-Naggar K., Abdo M. Probiotics and plant-derived compounds as eco-friendly agents to inhibit microbial toxins in poultry feed: a comprehensive review. // Environ. Sci. Poll. Res. 2018. Vol. 25. Р. 31971-31986.
8. Abd El-Ghany W.A. The potential uses of silymarin, a milk thistle (Silybum marianum) derivative in poultry production system. // Online J. Anim. Res. 2022. Vol. 12. nr 1. Р. 46-52.
9. Abdalla A.A., Abou-Shehema, Rawia B.M., Hamed S., Elden M.R. The effect of silymarin supplementation on the productivity of developed chickens in summer conditions 1-during the growth period. // Egypt. Poult. Sci, J. 2018. Vol. 38. nr 1. Р. 305-329.
10. Arain M.A., Nabi F., Shah Q.A., Alagawany M. The role of early feeding in improving performance and health of poultry: herbs and their derivatives. // Worlds Poultry Sci. J. 2022. nr 78. Р. 499-513.
11. Bonagurio L.P., Murakami A.E., Moreira C.A. et al. Dietary supplementation with inosine-5′-monophosphate improves the functional, energetic, and antioxidant status of liver and muscle growth in pigs. // Sci. Rep. 2022. nr 12. Р. 350-365.
12. Campbell D.L.M., Haas de E.N., Lee C. A review of environmental enrichment for laying hens during rearing in relation to their behavioral and physiological development. // Poultry Sci. Vol. 98. nr 1. 2019. P. 9-28.
13. Eid R.A.Y.Z., Hassan S.A., El-Soud, Eldebani N. The protective role of silymarin to ameliorate the adverse effects of ochratoxin-a in laying hens on productive performance, blood biochemistry, hematological and antioxidants status. // Braz. J. Poultry Sci. 2022. Vol. 24. https://doi.org/10.1590/1806-9061-2021-1515
14. Giersberg M.F., Spindler B. Kemper N. Assessment of plumage and integument condition in dual-purpose breeds and conventional layers. // Animals. 2017. Vol. 7. Р. 97.
15. Guo W., Xiang Q., Mao B. et al. Protective effects of microbiome-derived inosine on lipopolysaccharide-induced acute liver damage and inflammation in mice via mediating the TLR4/NF-κB pathway. // J. Agric. Food Chem. 2021. nr 69. Р. 7619-7628.
16. Hashemi Jabali N.S., Mahdavi A.H., Ansari Mahyari S., Sedghi M., Akbari Moghaddam Kakhki R. Effects of milk thistle meal on performance, ileal bacterial enumeration, jejunal morphology and blood lipid peroxidation in laying hens fed diets with different levels of metabolizable energy. // J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. 2018. Vol. 102. nr 2. Р. 410-420.
17. Khosravi M., Parizadian Kavan B., Khosravinia H. Effect of dietary levels of milk thistle extract (Silybum marianum) on serum parameters and egg quality in laying hens imposed to dexamethasone-induced stress. // Veter. Res. Biol. Prod. 2020. Vol. 33. nr 2. Р. 56-67.
18. Li N., Ren Z., Li D., Zeng L. Review: Automated techniques for monitoring the behaviour and welfare of broilers and laying hens: towards the goal of precision livestock farming. // Animal. 2020. Vol. nr 14. Р. 617-625.
19. Shahrajabian Mohamad H., Cheng Qi, Sun Wenli. Application of herbal plants in organic poultry nutrition and production. // Curr. Nut. Food Sci. 2022. Vol. 18. nr 13. Р. 629-641.
20. Sharma N., Hunt P.W., Hine B.C., Ruhnke I. The impacts of Ascaridia galli on performance, health, and immune responses of laying hens: new insights into an old problem. // Poultry Sci. 2019. Vol. 98. nr 12. P. 6517-6526.
21. Settle T., Carro M.D., Falkenstein E., Radke W., Klandorf H. The effects of allopurinol, uric acid, and inosine administration on xanthine oxidoreductase activity and uric acid concentrations in broilers. // Poultry Sci. 2012. nr 91. Р. 2895-2903.
22. Sharma M.K., Dinh T., Adhikari P.A. Production performance, egg quality, and small intestine histomorphology of the laying hens supplemented with phytogenic feed additive. // J. Appl. Poultry Res. 2020. Vol. 29. nr 2. P. 362-371.
23. Šťastník O., Mrkvicová E., Pavlata L., Roztočilová A., Umlášková B., Anzenbacherová E. Performance, biochemical profile and antioxidant activity of hens supplemented with addition of Milk Thistle (Silybum marianum) seed cakes in diet. // Acta Univ. Agric. Silvicult. Mendel. Brunensis. 2019. Vol. 67. nr 4. Р. 993 -1003.
24. Wang J., Wang N., Li L., Ren Z. Springer real-time behavior detection and judgment of egg breeders based on YOLO v3. // Neur Comp. Applic.. 2020. Vol. 32. Р. 5471-5481.
25. Zepp M., Louton H., Erhard M., Schmidt P., Helmer F., Schwarzer A. The influence of stocking density and enrichment on the occurrence of feather pecking and aggressive pecking behavior in laying hen chicks. // J. Veter. Behav. 2018. Vol. 24. P. 9-18.
26. Zhu Y., Wang X., Zhu L. et al. Lactobacillus rhamnosus GG combined with inosine ameliorates alcohol-induced liver injury through regulation of intestinal barrier and Treg/Th1 cells. // Toxic. Appl. Pharm. 2022. Vol. 439. nr 15. Р. 115-123.