Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Цель работы – систематизация результатов изучения антигенов групп крови, используемых для аттестации пород у 8 видов жвачных животных. Установлена схожесть антитела анти-J КРС и яка с анти-R овец и коз. Эффективность использования анти-R (анти-J) антитела для диагностики R антигена групп крови у коз снижается в следующей последовательности: козы, КРС, яки, овцы. Генетическая структура J системы у коз, КРС и яка одинаковая, она состоит из двух антигенов и аллелей и 3-х генотипов. У овец R система в генетическом плане более сложная. Проявление R антигена овец возможно при наличии 4-х генотипов: RR/RII/I, RR/RII/i, RR/rII/I, RR/rII/i. Для проявления О антигена необходимо сочетание генотипов Rr/rII/I и Rr/rII/i. Проявление Ii/i гомозиготы возможно при наличии 3-х генотипов: RR/RIi/i, RR/rIi/i, Rr/rIi/i. При этом происходит эпистазирование (подавление) проявления R и О антигенов. В генетических системах R и I у овец одни аллели (RR и II) доминируют над вариантам Rr и Ii. У коз можно использовать 10 из 15 овечьих диагностикумов, вскрывающих антигены A, B, C, M, R локусов. Они используются для аттестации пород коз. наряду с 31 козьими моноспецифическими сыворотками. У верблюдов, лосей, сайгаков и овцебыков нет естественных антител в крови, идентичных тем, которые есть у других жвачных животных. В набор для аттестации пород коз вошли 12 локусов микросателлитов КРС, 6 – овец, 8 – козьих с указанием их расположения на хромосомах у конкретного вида животного. Только у 4-х локусов неизвестно, на хромосоме какого вида они расположены. У овец 28 из 30 локусов, рекомендованных FAO/ISAG, расположены на овечьих и только 2 – на козьих хромосомах. Многие локусы, взяты у КРС в силу общности участков ДНК. У верблюдов, лосей, сайгаков и овцебыков не выявлены естественные антитела. Исследование мтДНК 48 пород овец из Евразии, показало наличие 4-х гаплотипов (А, В, С и D) на Кавказе, 3 – в Центральной Азии (А, В, С) и 2 – в Восточной Европе (А, В). Впервые у карачаевской породы был открыт D гаплотип. Bсходя из общности участков ДНК, подобраны 3 локуса микросателлитов у КРС и столько же у лосей. Дана оценка уровню гетерозиготности по 6 локусам микросателлитов, возможности установления материнства и отцовства у потомства одомашниваемых лосей Костромской области. Выявлена возможность получения полноценной моноспецифической сыворотки анти-R для исследования R системы у коз
1. Зиганшина М.М., Бовин Н.В., Сухих Г.Т. Естественные антитела, как ключевой элемент механизма, поддерживающего гомеостаз в иммунной системе. // Иммунология. 2013. № 5. С. 277-282.
2. Люцканов П.И. Создание новых типов цигайских и каракульских овец в Республике Молдова с использованием генетических маркеров: автореф. дисс.…д.б.н. Подольск-Дубровицы: ВИЖ, 2009. 32 с.
3. Марзанов Н.С. Физиологические маркеры крови овец и коз: теоретические и прикладные аспекты их применения: автореф. дисс.…д.б.н. Подольск-Дубровицы, ВИЖ, 1994. 40 с.
4. Марзанов Н.С., Насибов М.Г., Озеров М.Ю., Кантанен Ю. Аллелофонд у различных пород овец по микросателлитам. Подольск-Дубровицы: 13 ФОРМАТ, 2004. 119 с.
5. Марзанов Н.С., Насибов М.Г., Марзанова Л.К., Озеров М.Ю., Кантанен Ю., Лобков В.Ю. Генетические маркеры в теории и практике разведения овец. М.: ИЦ Пионер, 2010, 184 с.
6. Марзанов Н.С., Комкова Е.А., Малюченко О.П., Алексеев Я.И., Озеров М.Ю., Кантанен Ю., Лобков В.Я., Марзанова Л.К., Астафьева Е.Е., Петров С.Н., Колпаков И.Н., Андрюхин А.П., Адамян К.К., Марзанова С.Н. Характеристика аллелофонда романовской породы овец по различным типам генетических маркеров. // Проблемы биологии продуктивных животных. 2015. № 2. С. 23-40.
7. Марзанов Н.С., Девришов Д.А. Марзанова С.Н., Корецкая Е.А., Озеров М.Ю. Оценка овец романовской породы по различным типам иммунологических и генетических маркеров. М.: Академия Принт, 2022. 154 с. DOI 10.18720/SPBPU/2/z21-42
8. Марзанов Н.С., Эрбутаев А.К. Изготовление моноспецифических сывороток для изучения групп крови у коз. // Тезисы докладов конференции: «Научные достижения молодых ученых - сельскохозяйственному производству». Ставрополь, 1985. С. 66-67.
9. Марзанова Л.К. Иммунобиотехнологические свойства крови и молока у коз: автореф. дисс.…к.б.н. Подольск-Дубровицы: ВИЖ, 2002. 22 с.
10. Марзанова С.Н., Девришов Д.А., Марзанов Н.С. ДНК-идентификация лосей по микросателлитам. Москва: Сельскохозяйственные технологии, 2023. 112 с. DOI: 10.18720/SPBPU/2/z23-3
11. Насибов М.Г., Марзанова Л.К., Канатбаев С.Г., Чмирков Е.В., Марзанов Н.С. Идентификация антигенов и систем групп крови у различных видов животных. // Сельскохозяйственная биология. 2005. № 6. С. 119-125.
12. Тапио М., Марзанов Н.С., Озеров М.Ю., Тапио И., Цинкулова М., Гончаренко Г.М., Киселева Т.Ю., Муравский М., Вииналас Х., Кантанен Ю. Оценка биоразнообразия овец по митохондриальной ДНК (mtДНК). Мат. межд. конф.: «Научное наследие Н.И. Вавилова – фундамент развития отечественного и мирового сельского хозяйства». Москва: РГАУ-МСХА, 2007. С.145-146.
13. Тихонов В.Н. Использование групп крови при селекции животных. М. Колос, 1967. 392 с.
14. Bialosuknia W., Kaczkowski B. On the differentiation of various breeds of sheep by means of serological methods. // J. Immunol. 1924. Vol. 9. P. 595-601.
15. Chessa B., Pereira F., Arnaud F. et al. Revealing the history of sheep domestication using retrovirus integrations. Science. 2009. Vol. 324. nr 5926. P. 532-536. DOI: 10.1126/science.1170587
16. Ehrlich P., Morgenroth T. Uber hemolysine. 3. Mitteilung. // Berl. Klin. Wochenschr. 1900. Bd 37. S. 453-458.
17. Healy P.J. Distribution of R, r, i blood group system in Australian sheep. // Anim. Blood Groups Biochem. Polymorph. 1972. Vol. 3. nr 4. P. 241-244.
18. Martchenko D., Prewer E., Latch E.K., Kyle C.J., Shafer A.B.A. Population Genomics of Ungulates. In book: Population Genomics: Wildlife (P.A. Hohenlohe, Ed.). Springer, Cham. 2018. DOI: 10.1007/13836_2018_30
19. Marzanov N.S., Devrishov D.A., Ozerov M.Y., Maluchenko O.P., Marzanova S.N., Shukurova E.B., Koreckaya E.A., Kantanen J., Petit D. The Significance of a multilocus analysis for assessing the biodiversity of the romanov sheep breed in a comparative aspect // Animals (MDPI - Multidisciplinary Digital Publishing Institute). 2023. Vol. 13. e1320. https://doi.org/10.3390/ani13081320
20. Nguyen T.C. Genetic systems of red cell blood groups in goats. // Animal Genetics. 1990. Vol. 21. P.133-245. DOI: 10.1111/j.1365-2052.1990.tb03233.x
21. Nesse L.L. Immunogenetic studies in goats. Oslo, 1989. 25 p.
22. Ozerov M., Tapio M., Marzanov N., Kiseleva T., Kantanen J. Genetic differentiation of East European and Caucasian sheep breeds by microsatellites. Proceedings of the XI Baltic Animal Breeding and Genetics Conference. Palanga. Lithuania. 2005. P.132-136.
23. Osterhoff D.R., Schmid D.O., Schoeman S.M. The stability of genetic markers as identified in goat. // S. Afr. J. Anim. Sci. 1987. Vol.17. nr 3. P. 133-137.
24. Rasmusen B.A., Stormont C., Suzuki. Blood Groups in sheep. III. The A, C, D and B – system. // Genetics. 1960. Vol. 145. P. 1595-1603.
25. Rasmusen B.A. Blood Groups Polymorphisms // In: Hutt F.B., Rasmusen B.A. Animal Genetics. 2nd ed. John Wiley and Sons, 1982. Chapter 21. P. 488-507.
26. Rendel J. Further studies on some antigenic characters of sheep blood determined by epistatic action of genes. // Acta Agricult. Scand. 1957. Vol. 7. nr 2. P. 224-259.
27. Sartore G. Recherche sul sistema R-O del groupe sanguine della specie ovine. // Genetics. 1963. Vol. 17. P. 22.
28. Tapio M., Marzanov N., Ozerov M., Cinkulov Mirjana, Gonzarenko G., Kiselyova T., Murawski M., Viinalass H., Kantanen J. Sheep Mitochondrial DNA Variation in European, Caucasian, and Central Asian Areas. // Mol. Biol. Evol. 2006. Vol. 23. nr 9. P. 1776-1783. DOI: 10.1093/molbev/msl043.
29. Tucker E.M. The appearance of R - and O - substance on the red cells of lambs. // Immunogen. Lett. 1964. Vol. 3. P. 133.
30. Tucker E.M., Clarke S.W. Comparative aspects of biochemical polimorphism in the blood of Caprinae and their hybrids // Anim. Blood Groups Biochem. Genet. 1980. Vol. II. nr 3. P. 163-183.
DOI: 10.1111/j.1365-2052.1980.tb01505.x
31. Van Dam R.H., D'Amaro J., Van Kooten P.J.S., Van der Donk, Goudswaard J. The Histocompatibility comlex GLA in the goat. // Anim. Blood Groups and Biochem. Genet. 1979. Vol. 10. P. 121-124.
DOI: 10.1111/j.1365-2052.1979.tb01015.x
32. Ycas M.K.W. Studies of the development of a normal antibody and of cellular antigen in the blood of sheep. // J. Immunol. 1949. Vol. 61. nr 3-4. P. 327-347.
33. Zhang M., Peng W.F., Yang G.L. et al. Y chromosome haplotype diversity of domestic sheep (Ovis aries) in Northern Eurasia. // Animal Genetics. 2014. Vol. 45. nr 6. P. 903-907. https://doi.org/10.1111/ age.12214