Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный исследовательский центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Актуальными направлениями в развитии технологий рыбоводства является изучение физиологических потребностей рыб, видовых особенностей белкового метаболизма и поиск экономически обоснованных альтернатив традиционной рыбной муке. Цель исследования – систематизация новейших данных о видовых и возрастных особенностях потребности в незаменимых аминокислотах (метионин, лизин, треонин, триптофан), о физиологических ограничениях в усвоении кормового белка и его роли для повышения продуктивности и поддержания здоровья у карповых рыб. Особое внимание уделено альтернативным источникам протеина таким как соевый, хлопковый, рапсовый шроты, кукурузная глютеновая мука – с анализом их достоинств и недостатков (дефицит аминокислот, антипитательные факторы). В качестве замены рыбной муке (РМ) рассмотрены побочные продукты животного происхождения, такие как мука из субпродуктов птицы, которой можно заменить до 50% РМ в составе кормов. Описано применение фитобиотиков в кормах для аквакультуры – микроводорослей, дрожжей и бактериальных белков с оценкой питательной ценности и перспектив применения, а также белков из насекомых (чёрная львинка, мучной хрущак) с указанием оптимальных уровней включения в рацион. Сделано заключение о необходимости дальнейших исследований для разработки сбалансированных кормов, сочетающих доступность, питательную ценность и экологическую безопасность.
1. Агеев А.В. Рыбная мука и аквакультура. // Комбикорма. 2022. № 12. С. 20-24.
2. Додаев К.А., Ниёзов Х.Н., Суюндиков У.А., Худайберганов Х.Ш. Потребность в белках, маслах, углеводах, минералах при выращивании рыбы. // Экономика и социум. 2020. №11. С. 647-651.
3. Колмаков В.И., Колмакова А.А. Аминокислоты в перспективных кормах для аквакультуры рыб: обзор экспериментальных данных. // Журнал Сибирского федерального университета. Биология. 2020. Т. 13. №. 4. С. 424-442.
4. Радчиков В.Ф. и др. Повышение эффективности выращивания карпа за счет снижения стоимости комбикормов. // Механизация и электрификация сельского хозяйства. 2022. № 55. С. 52-56.
5. Скляров В.Я. Корма и кормление рыб в аквакультуре. М.: Изд-во ВНИРО, 2008. 150 с.
6. Щербина М.А., Гамыгин Е.А. Кормление рыб в пресноводной аквакультуре. М.: Изд-во ВНИРО, 2006. 360 с.
7. Японцев А., Лемме А., Коблер К. Оптимизация уровня синтетических аминокислот в кормах для карпа. // Комбикорма. 2014. №. 1. С. 65-66.
8. Ahmed I., Khan M. A. Dietary tryptophan requirement of fingerling Indian major carp, Cirrhinus mrigala (Hamilton). // Aquaculture research. 2005. Vol. 36. nr 7. P. 687-695.
9. Ayub A., Rasool F., Khan N., Qaisrani S.N. Limiting amino acids supplementation in low crude protein diets and their impacts on growth performance and carcass composition in Labeo rohita (rohu) adult fish. // Brazilian Journal of Biology. 2021. Vol. 83: e249422.
10. Chamodi K.K.D., Nguyen V.T., Domingos J., Loh J.-Y. Cellular solutions: evaluating single-cell proteins as sustainable feed alternatives in aquaculture. // Biology. 2025. Vol. 14. nr 7. P. 764.
11. Chen W., Luo L., Han D., Long F. Effect of dietary supplementation with Chlorella sorokiniana meal on the growth performance, antioxidant status, and immune response of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). // Journal of Applied Phycology. 2021. Vol. 33. nr 5. P. 3113-3122.
12. Corcoran M., Roberts-Sweeney H. Aquatic animal nutrition for the exotic animal practitioner. // The Veterinary Clinics of North America. Exotic Animal Practice. 2014. Vol. 17. nr 3. P. 333-346.
13. Debnath S., Saikia S.K. Absorption of protein in teleosts: a review. // Fish Physiology and Biochemistry. 2021. Vol. 47. nr 2. P. 313-326.
14. Stephen J. et al. Fermented cottonseed meal as an alternative for groundnut oil cake in aquafeed //International Journal of Fisheries and Aquatic Studies. 2022. Vol. 10. nr 1. P. 151-154.
15. Dong Y.W. et al. Nutritional digestion and absorption, metabolism fates alteration was associated with intestinal function improvement by dietary threonine in juvenile grass carp (Ctenopharyngodon Idella). // Aquaculture. 2022. Vol. 555: 738194.
16. Du Y. et al. Effects of supplementing coated methionine in a high plant-protein diet on growth, antioxidant capacity, digestive enzymes activity and expression of TOR signaling pathway associated genes in gibel carp, Carassius auratus gibelio. // Frontiers in Immunology. 2024. Vol. 15: 1319698.
17. Fang C.C. et al. Effects of dietary methionine on growth performance, muscle nutritive deposition, muscle fibre growth and type I collagen synthesis of on-growing grass carp (Ctenopharyngodon idella). // British Journal of Nutrition. 2021. Vol. 126. nr 3. P. 321-336.
18. Fantatto R.R. et al. Exploring sustainable alternatives in aquaculture feeding: the role of insects. // Aquaculture Reports. 2024. Vol. 37: 102228.
19. Fernandes T., Cordeiro N. Microalgae as sustainable biofactories to produce high-value lipids: Biodiversity, exploitation, and biotechnological applications. // Marine drugs. 2021. Vol. 19. nr 10. P: 573.
20. Gamboa‐Delgado J., Márquez‐Reyes J.M. Potential of microbial‐derived nutrients for aquaculture development. // Reviews in Aquaculture. 2018. Vol. 10. nr 1. P. 224-246.
21. Gao S. et al. Microalgae as fishmeal alternatives in aquaculture: Current status, existing problems, and possible solutions. // Environmental Science and Pollution Research. 2024. Vol. 31. nr 11. P. 16113-16130.
22. Glencross B.D., Huyben D., Schrama J. W. The application of single-cell ingredients in aquaculture feeds: a review. // Fishes. 2020. Vol. 5. nr 3. P. 22.
23. Harmantepe B., Yılmaz E. Effects of spirulina and chlorella used as protein source on growth and digestion enzymes of common carp (Cyprinus carpio, L., 1758). // Turkish Journal of Agriculture-Food Science and Technology. 2025. Vol. 13. nr 3. P. 787-793.
24. Hofer R. Cyprinid fishes: systematics, biology and exploitation. Dordrecht: Springer Netherlands, 1991. P. 413-425.
25. Hu Y. et al. Lysine deficiency impaired growth performance and immune response and aggravated inflammatory response of the skin, spleen and head kidney in grown-up grass carp (Ctenopharyngodon idella). // Animal Nutrition. 2021. Vol. 7. nr 2. P. 556-568.
26. Hussain S.M. et al. Substitution of fishmeal: highlights of potential plant protein sources for aquaculture sustainability.// Heliyon. 2024. Vol. 10. nr 4: e26573.
27. Jia S. et al. Protein-sourced feedstuffs for aquatic animals in nutrition research and aquaculture. // Recent advances in animal nutrition and metabolism. Cham: Springer International Publishing. 2021. Vol. 1354. P. 237-261.
28. Ip Y.K., Chew S.F. Ammonia production, excretion, toxicity, and defense in fish: a review. // Frontiers in Physiology. Sec. Aquatic Physiology. 2010. Vol. 1: 134
29. Khan M.A., Abidi S.F. Dietary methionine requirement of I ndian major carp fry, C irrhinus mrigala (H amilton) based on growth, feed conversion and nitrogen retention efficiency. // Aquaculture Research. 2013. Vol. 44. nr 2. P. 268-281.
30. Li S. et al. Defatted black soldier fly (Hermetia illucens) larvae meal in diets for juvenile Jian carp (Cyprinus carpio var. Jian): Growth performance, antioxidant enzyme activities, digestive enzyme activities, intestine and hepatopancreas histological structure. // Aquaculture. 2017. Vol. 477. P. 62-70.
31. Liang X. et al. Effects of dietary protein sources on growth performance and feed intake regulation of grass carp (Ctenopharyngodon idellus). // Aquaculture. 2019. Vol. 510. P. 216-224.
32. Lin Y. H., Cheng M. Y. Effects of dietary organic acid supplementation on the growth, nutrient digestibility and intestinal histology of the giant grouper Epinephelus lanceolatus fed a diet with soybean meal. // Aquaculture. 2017. Vol. 469. P. 106-111.
33. Macusi E.D. et al. Factors that influence small-scale Fishers’ readiness to exit a declining fishery in Davao Gulf, Philippines. // Ocean Coast. Manag. 2022. Vol. 230: 106378
34. Marzouk Y. et al. Impacts of poultry by-product meal substituting fishmeal on growth efficiency, body composition, liver, and intestine morphology of European sea bass, Dicentrarchus. // Food Chemistry. 2024. Vol. 23: 101569.
35. Jobling, M. National Research Council (NRC): Nutrient requirements of fish and shrimp. // Aquaculture International. 2012. Vol. 20. P. 601-602
36. Øverland M., Skrede A. Yeast derived from lignocellulosic biomass as a sustainable feed resource for use in aquaculture. // Journal of the Science of Food and Agriculture. 2017. Vol. 97. nr 3. P. 733-742.
37. Ruiz A. et al. Single cell protein from methanotrophic bacteria as an alternative healthy and functional protein source in aquafeeds, a holistic approach in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) juveniles. // Aquaculture. 2023. Vol. 576: 739861.
38. Samsing F. et al. Replacement of fishmeal with a microbial single‐cell protein induced enteropathy and poor growth outcomes in barramundi (Lates calcarifer) fry. // Journal of Fish Diseases. 2024. Vol. 47. nr 9: e13985.
39. Serra V. et al. Alternative protein sources in aquafeed: Current scenario and future perspectives. // Veterinary and Animal Science. 2024. Vol. 25: 100381.
40. Signor A. et al. Lisina em dietas para alevinos de carpa comum. // Boletim do Instituto de Pesca. 2017. Vol. 43. nr 3. P. 464-473.
41. Tang L. et al. Effect of tryptophan on growth, intestinal enzyme activities and TOR gene expression in juvenile Jian carp (Cyprinus carpio var. Jian): Studies in vivo and in vitro. // Aquaculture. 2013. Vol. 412. P. 23-33.
42. Wu P. et al. The relationship between dietary methionine and growth, digestion, absorption, and antioxidant status in intestinal and hepatopancreatic tissues of sub-adult grass carp (Ctenopharyngodon idella). // Journal of Animal Science and Biotechnology. 2017. Vol. 8. nr 1. P. 63.
43. Xu X. et al. Effects of replacing fishmeal with cottonseed protein concentrate on growth performance, flesh quality and gossypol deposition of largemouth bass (Micropterus salmoides). // Aquaculture. 2022. Vol. 548: 737551.
44. Zehra S., Khan M.A. Dietary tryptophan requirement of fingerling Catla catla (Hamilton) based on growth, protein gain, RNA/DNA ratio, haematological parameters and carcass composition. // Aquaculture nutrition. 2015. Vol. 21. nr 5. P. 690-701.