Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Ведущими факторами, способствующими заболеваниям телят, являются нарушения
условий внутриутробного развития и срыв адаптационных реакций в раннем постнатальном
периоде. Целью работы было изучение гематологического и микроэлементного статуса
глубокостельных коров и полученных от них телят второго дня жизни для разработки тестов –
предикторов развития бронхопневмонии. Проанализировано количество эритроцитов,
концентрация гемоглобина, гематокрит, средний объём эритроцитов (MCV), среднее
содержание гемоглобина в эритроцитах (MCH), средняя концентрация гемоглобина в
эритроцитарной массе (MCHC), распределение эритроцитов по величине (RDW) и содержание
в сыворотке крови макро-и микроэлементов, участвующих в кроветворении (кальция, магния,
железа, меди, цинка, кобальта, молибдена). У всех телят в течение первого месяца жизни
регистрировали респираторные заболевания, у 7 животных микробронхит осложнился
бронхопневмонией. Ретроспективно выборки взрослых и новорожденных животных были
разделены на 2 группы каждая: Iт (n=26) и Iк (n=26) – телята с неосложнённым течением
бронхита и их матери; IIт (n=7) и IIк (n=7) – телята, заболевшие бронхопневмонией, и их
матери. В группах Iк и IIк содержание кальция и магния было в пределах нормы; ниже
референсных значений было содержание меди (M±σ: 0,51±0,11 и 0,60±0,17 мг/л
cоответственно), цинка (0,58±1,53 и 0,40±0,63 мг/л), кобальта (22,3±7,3 и 20,8±5,6 мкг/л),
содержание железа превышало референсные значения (2,8±1,2 и 2,7±0,9 мг/л,
соответственно). Большая часть показателей гемопоэза не выходила за границы нормы;
значения MCHC (в группах Iк и IIк 39,3±1,4 и 37,9±1,6 г/л, Р<0,05) превышали референсные
уровни. У животных IIк группы был снижен RDW (Р<0,01) по сравнению с Iк группой. У
телят установлены низкие в сравнении с референсными уровнями концентрации меди
(0,33±0,19 и 0,36±0,15 мг/л) и цинка (0,61±1,03 и 0,59±0,55 мг/л), избыток железа (4,5±3,9 и
2,6±1,7 мг/л) и кобальта (65,8±44,8 и 63,2±30,0 мкг/л) в сыворотке крови; были снижены MCV
(P<0.05) и гематокрит (28,2±5,8 и 28,4±2,7%). Статистически значимых отличий по
содержанию микроэлементов между группами Iк и IIк, Iт и IIт выявлено не было. В
соответствии с результатами исследования, телята в ранний неонатальный период с
дефицитом меди, гиперферремией и предрасположенностью к развитию микроцитарной
гипохромной анемии, полученные от коров с гипокупремией, гипокобальтемией и признаками
макроцитоза, должны быть отнесены к группе риска по бронхопневмонии.
1. Бояркина А.В., Потапов А.Л. Методология оценки информационной значимости диагностических
тестов в анестезиологии и реаниматологии // Вестник анестезиологии и реаниматологии. – 2018. – Т.
12. – № 5. – С. 71-75.
2. Данилов С.Н. Респираторные заболевания телят в промышленном животноводстве // Ветеринария. –
2011. – № 3. – С. 12-14.
3. Долгов В.В., Меньшиков В.В. Клиническая лабораторная диагностика: национальное руководство. –
Т. I. – М.: ГЭОТАР-Медиа, 2012. – 928 с.
4. Донина Ж.А. Межсистемные взаимоотношения дыхания и кровообращения // Физиология человека.
– 2011. – Т. 37. – № 2. – С. 117-128.
5. Замана С.П. Определение химического элементного состава волосяного покрова у крупного
рогатого скота // Сельскохозяйственная биология. – 2006. – № 4. – С. 121-125.
6. Камышникова В.С. (Ред.). Методы клинических лабораторных исследований. – М.: МеУДпрессинформ, 2009. – 752 с.
7. Кондрахин И.П. Методы ветеринарной клинической лабораторной диагностики. – М.: Колосс, 2004.
– 520 с.
8. Королюк И.П. Медицинская информатика. – Самара: Офорт - СамГМУ. – 2012. – 244 с.
9. Кустаров В.Н., Линде В.А. Гестоз: патогенез, симптоматика, лечение. – СПб.: Гиппократ, 2000.
– 160 с.
10. Михалёв В.И. Содержание половых стероидов в крови коров в последний месяц стельности и во
время родов // Мат. межд. научно-произв. конференции "Актуальные проблемы болезней органов
размножения и молочной железы у животных". – Воронеж: Европолиграфия, 2005. – С. 344-347.
11. Покровский В.М., Коротько Г.Ф. Физиология человека. – Москва: Медицина, 2003. – 656 с.
12. Пустозеров П.А., Гизатуллина Ф.Г., Гизатуллин И.А. Изменения морфобиохимического состава
крови телят, больных бронхопневмонией, в условиях биогеохимической провинции // Аграрный
вестник Урала. – 2011. – № 10. – С. 11-12.
13. Серебрякова Е.Н., Миночкин П.И., Волосников Д.К. Предикторы летального исхода у
новорожденных с синдромом полиорганной недостаточности // Трудный пациент. – 2014. – Т. 12. –
№ 8-9. – С. 36–38.
14. Шабунин С.В., Шахов А.Г., Черницкий А.Е., Золотарев А.И., Рецкий М.И. Респираторные болезни
телят: современный взгляд на проблему // Ветеринария. – 2015. – № 5. – С. 3-13.
15. Шахов А.Г. Эколого-адаптационная система защиты животных и продуктивности животных в
современных условиях. – Воронеж: ВГУ, 2001. – 207 с.
16. Шахов А.Г., Алехин Ю.Н., Шабунин С.В., Сашнина Л.Ю., Федосов Д.В., Ерина Т.А., Пригородова
О.В., Сидельникова И.Р. Методическое пособие по диагностике и профилактике нарушений
антенатального и интранатального происхождения у телят. – Воронеж: «Истоки», 2013. – 92 с.
17. Ackermann M.R., Derscheid R., Roth J.A. Innate immunology of bovine respiratory disease // Vet. Clin.
North Am. Food Anim. Pract. – 2010. – Vol. 26. – No. 2. – P. 215-228.
18. Aich P., Babiuk L.A., Potter A.A., Griebel P. Biomarkers for prediction of bovine respiratory disease
outcome // OMICS: A journal of integrative biology. – 2009. – Vol. 113. – P. 199-210.
19. DeLong E.R., DeLong D.M., Clarke-Pearson D.L. Comparing the areas under two or more correlated
receiver operating characteristic curves: a nonparametric approach // Biometrics. – 1988. – Vol. 44. – P.
837-845.
20. Hostetler C.E., Kincaid R.L., Mirando M.A. The role of essential trace elements in embryonic and fetal
development in livestock // Vet. J. – 2003. – Vol. 166. – P. 125-139.
21. Kasper D.L., Fauci A.S., Hauser S.L., Longo D.L., Jameson J.L., Loscalzo J. (Eds). Harrison's Principles of
Internal Medicine. – New York: McGraw Hill Education Medical Publ., 2015.
22. Kirschvink N. Respiratory function in cattle: impact of breed, heritability, and external factors // Dtsch.
Tieraertzl. Wschr. – 2008. – Vol. 115. – P. 265-270.
23. Lamand M. Carences en oligo-éléments // Farm Animals. – 2013. – No 3-4. – P. 84-90.
24. McGuirk S.M. Disease management of dairy calves and heifers. Veterinary Clinics of North America //
Food Animal Practice. – 2008. – Vol. 24. – P. 139-153.
25. Pavlata L., Pechova A., Dvorak R. Microelements in colostrum and blood of cows and their calves during
colostral nutrition // Acta Vet. Brno. – 2004. – Vol. 73. – P. 421-429.
26. Taguchi K., Fukusaki E., Bamba T. Simultaneous analysis for water- and fat-soluble vitamins by a novel
single chromatography technique unifying supercritical fluid chromatography and liquid chromatography. //
J. Chromatogr. A. – 2014. – Vol. 1362. – P. 270-277.
27. Varney M.E., Buchanan J.T., Dementieva Y., Hardman W.E., Sollars V.E. A high omega-3 fatty acid diet
has different effects on early and late stage myeloid progenitors // Lipids. – 2011. – Vol. 46. – No. 1. – P.
47-57.