Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
1Галочкин В.А., 2Боряев Г.И., 1Агафонова А.В., 1Галочкина В.П.
1ВНИИ физиологии, биохимии и питания сельскохозяйственных животных,
Боровск Калужской обл., 2Пензенская государственная аграрная академия,
Пенза, Российская Федерация
Цель работы − испытание нового адаптогенного препарата – оксиглицината лития для повышения стрессоустойчивости у свиноматок и поросят молочного периода выращивания. Опыт проведен на двух группах свиноматок по 4 головы в группе и на четырех группах поросят по 16 голов каждая. Свиноматкам опытной группа через 1 месяц после осеменения вводили в/м пролонгированную форму оксиглицината лития (ОГЛ) в дозе 2 мг/кг ЖМ. Первая (контроль) и вторая группы поросят были взяты от свиноматок контрольной группы, во 2-й группе в трехсуточном возрасте вводили в/м ОГЛ в дозе 2 мг/кг ЖМ, 3-я и 4-я группы состояли из поросят от свиноматок опытной группы, в 4-й группе инъецировали ОГЛ в такой же дозе, как свиноматкам и поросятам 2-й группы. Пробы крови отбирали в конце опыта до отъема поросят в 30-дневном возрасте. Однократное введение ОГЛ свиноматкам не повлияло на их плодовитость и живую массу поросят при рождении. Сохранность поросят во 2-й и 4-й группах была выше (90 и 95%, против 76% в контроле, Р=0,06), а ЖМ к моменту отъема была на 10 и 13% выше, чем у поросят контрольной группы. У поросят 3-й группы ЖМ была на 5% выше, чем в контроле, но ниже, чем у поросят 2-й и 4-й групп. В месячном возрасте у поросят 2-й и 4-й групп концентрация в плазме крови холестерола липопротеинов высокой плотности была выше, чем в контроле на 8 (Р<0,1) и 17% (Р<0,05) соответственно; в этих же группах было повышенным отношение содержания сульфгидрильных групп к дисульфидным (SH/SS) в плазме крови (Р<0,05). Через 27 дней после инъекции во 2-й и 4-й группах уровень адреналина и норадреналина в плазме крови был существенно понижен относительно контроля (по адреналину в 3-4 раза, Р<0,05, по норадреналину в 4-5 раз, Р<0,05). Сделан вывод о высокой эффективности сочетанного применения инъекционных форм оксиглицината лития свиноматкам и выращиваемым под ними поросятам.
1. Базян Ф.С., Григорьян Г.Ф. Молекулярно-химические основы эмоциональных состояний и подкреплений // Успехи физиологических наук. − 2006. − Т. 37. − № 1. − С. 68-83.
2. Галочкин В.А., Галочкина В.П., Остренко К.С. Разработка теоретических основ и создание антистрессовых препаратов нового поколения // Сельскохозяйственная биология. − 2009. − № 2. − С. 43-55.
3. Галочкин В.А., Галочкина В.П., Остренко К.С. Способ повышения стрессустойчивости животных: патент RUS № 2402205. 08.06.2009.
4. Галочкин В.А., Черепанов Г.Г. Неспецифическая резистентность продуктивных животных: трудности идентификации, проблемы, пути решения // Проблемы биологии продуктивных животных. − 2013. − № 1. − С. 5-29.
5. Замощина Т.А., Шрейм Х.М., Иванова Е.В. Влияние лития оксибутирата на ритмическую организацию суточной динамики содержания катионов Na+, K+, Ca+ и Li+ в крови, мозге и моче крыс в период летнего солнцестояния // Бюллетень Сибирского медицинского научно-практического журнала. − 2005. − Т. 4. − № 4. − С. 35-42.
6. Ковалев И.Е., Полевая О.Ю. Биохимические основы иммунитета к низкомолекулярным соединениям. − М.: Наука, 1987. − 190 с.
7. Любимов Б.И., Толмачева Н.С., Островская Р.У. и др. Экспериментальное изучение нейротропной активности лития оксибутирата // Фармакология и токсикология. − 1980. − № 43. − С. 395-401.
8. Любимова Б.И. (Ред.). Новые данные по фармакологии и клиническому применению солей лития. − М.: Наука, 1984. − 231 с.
9. Соколовский В.В. Тиолдисульфидное соотношение крови как показатель неспецифической резистентности организма. − СПб.: Наука, 1996. − 30 с.
10. Сытинский И.А. Гамма-аминомасляная кислота — медиатор торможения. − Л.: Наука, 1977. − 134 с.
11. Фисинин В.И., Сурай П. Иммунитет в современном животноводстве и птицеводстве: от теории к практике иммуномодуляции // Птицеводство. − 2013. − № 5. − С. 3-12.
12. Шишкина Л.Н. Исследование синтетических и природных антиоксиднатов in vitro и in vivo. – М.: Наука, 1992. – 109 с.
13. Blalock J.E. The syntax of immune-neuroendocrine communication // Immunol. Today. − 1994. − Vol. 15. − P. 504-511.
14. Charmandari E., Tsigos C., Chrousos G. Endocrinology of the stress response // Annual Review of Physiology. − 2005. − Vol. 67. − P. 259-284.
15. Curley K.O.Jr., Neuendorff D.A., Lewis A.W., Cleere J.J., Welsh T.H., Randel R.D. Functional characteristics of the bovine hypothalamic-pituitary-adrenal axis vary with temperament // Hormones and Behavior. − 2008. − Vol. 53. − No. 1. − P. 20-27.
16. Schou M. Lithium studies. 3. Distribution between serum and tissies // Acta Pharmacol. Toxicol. − 1998. − Vol. 45. − No. 2. − P. 115-124.
17. Tsigos C., Chrousos G.P. Hypothalamic-pituitary-adrenal axis, neuroendocrine factors and stress // Journal of Psychosomatic Research. − 2002. − Vol. 53. − No. 4. − P. 865-871.