Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
ПОДДЕРЖАНИЕ ПАРТЕНОГЕНЕТИЧЕСКОГО РАЗВИТИЯ in vitro ООЦИТОВ СВИНЕЙ С ИСПОЛЬЗОВАНИЕМ ХОРИОНИЧЕСКОГО ГОНАДОТРОПИНА ЧЕЛОВЕКА
- Номер: 1
- Страницы: 50-56
Журнал: Проблемы биологии продуктивных животных
Аннотация:
Гонадотропины применяют в течение последних 50 лет во вспомогательных репродуктивных технологиях, однако есть данные о том, что гиперстимуляция гормонами может оказывать негативные эффекты на яйцеклетки и на пациентов. Цель исследования - изучить культуральные условия для созревания ооцитов свиней in vitro с использованием двух препаратов хорионического гонадотропина человека (хГч): Овогест (Оvogest, 8 IU/ml, Intervet, Нидерланды), полученный из мочи и используемый для обработки животных и Прегнил (Рregnyl, 8 IU/ml, MSD, Нидерланды), полученный из мочи и используемый в программах по экстракорпоральному оплодотворению у человека. Критерием успешного созревания считали наличие первого направительного тельца (стадия метафазы II), а также способность созревших ооцитов достигать стадии бластоцисты после искусственной (партеногенетической) активации. При использовании Овогеста показана тенденция к улучшению созревания ядра по сравнению с Прегнилом (59,5 vs 45,8%). После проведения искусственной активации, ооциты, достигшие стадии метафазы II, дробились примерно одинаково в обоих вариантах (89,4 vs 81,8%); при этом доля полученных бластоцист, и от общего числа активированных и от числа дробящихся после активации яйцеклеток, была больше в варианте с Прегнилом (42,4 vs 23,4% и 51,9 vs 26,2% (P<0,05). Полученные результаты партеногенетической активации эмбрионов свиней показывают, что хГч, применяемый для экстракорпорального оплодотворения у людей, может быть использован для созревания ооцитов свиней in vitro. Также представляется возможным использовать систему созревания ооцитов свиней in vitro в качестве культуральной модели для тестирования гормонов, применяемых в программах по экстракорпоральному оплодотворению у человека
Литература:
1. Сметанина И.Г., Татаринова Л.В., Кривохарченко А.С. Влияние гормонов на созревание ооцитов крупного рогатого скота invitro. // Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. 2014. № 5. С. 655-658.
2. Сметанина И.Г., Татаринова Л.В., Кириенко К.В., Максименко С.В. Использование коммерческих сред, разработанных для эмбрионов человека, в экспериментах по созреванию in vitro ооцитов свиней. // Проблемы биологии продуктивных животных. 2018. №.4. С. 110-115.
3. Сметанина И.Г., Татаринова Л.В., Кривохарченко А.С. Созревание ооцитов крупного рогатого скота invitro: модификация методики с применением рекомбинантного фолликулостимулирующего гормона человека. // Проблемы биологии продуктивных животных. 2019. № 1: С. 25-31.
4. Устюгов А.Ю., Румянцев С.А. Модели для изучения биологических свойств гемопоэтических стволовых клеток человека. // Гены и клетки. 2014. № 1. С. 15-22.
5. Bavister B.D. How animal embryo research led to the first documented human IVF. // RBM Online. 2002. Vol. 4. P. 24-29.
6. Cho S.K., Hwang K.C., Choi Y.J. et al. Production of transgenic pigs harboring the human erythropoietin (hEPO) gene using somatic cell nuclear transfer. // J. Reprod. Fertil. 2009. Vol. 55: P. 128-136.
7. Grupen C.G. The evolution of porcine embryo in vitro production. // Theriogenology. 2014. Vol. 81. P. 24-34.
8. Klymiuk N., Aigner B., Brem G. et al. Genetic modification of pigs as organ donors for xenotransplantation. // Mol. Reprod. Dev. 2010. Vol. 77. P. 209-221.
9. Krisher R.L.Utility of animal models for human embryo culture development: domestic species. // Methods in Molecular Biology Embryo Culture: Methods and Protocols (Gary D. Smith et al., еds). 2012. P. 27-37. l
10. Menezo Y.J.R., Herubel F. Mouse and bovine models for human IVF. // RBM Online. 2002. Vol. 4. P. 170-175.
11. Niemann H., Petersen B. The production of multitransgenic pigs: update and perspectives for xenotransplantation. // Transgenic Res. 2016. Vol. 25. P. 361-374.
12. Redel B.K., Spate L.D., Prather R.S. In vitro maturation, fertilization and culture of pig oocytes and embryos. // Methods Mol. Biol. 2019. Vol. 2006. P. 93-103.
13. Roberts R., Iatropoulou A., Ciantar D. et al.Follicle-stimulating hormone affects metaphase I chromosome alignment and increases aneuploidy in mouse oocyte matured in vitro. // Biol. Reprod. 2005. Vol. 72. P. 107-118.
14. Ross P.J., Sampaio R.V. Epigenetic remodeling in preimplantation embryos: cows are not big mice. // Anim. Reprod. 2018. Vol. 15. P. 204-214.
15. Sha W., Xu B.Z., Li M. et al. Effect of gonadotropins on oocytes maturation in vitro: an animal model. // Fertil. Steril. 2010. Vol. 93. P.1650-1661.
16. Sun Q.Y., Lai L., Park K.W. et al. Dynamic events are differently mediated by microfilaments, microtubules, and mitogen-activated protein kinase during porcine oocyte maturation and fertilization in vitro. // Biol. Reprod. 2001. Vol. 64. P. 879-889.
17. Uchida M.,Shimatsu Y., Onoe K. et al. Production of transgenic miniature pigs by pronuclear microinjection. // Transgenic Res. 2001. Vol. 10. P. 577-582.
18. Uhm S.J., Gupta M.K., Das Z.C. et al. Effect of transgene introduction and recloning on efficiency of porcine transgenic cloned embryo production in vitro. // Reprod. Dom. Anim. 2009. Vol. 44. P. 106-115.
19. Wall R.J., Shani M. Are animal models as good as we think? // Theriogenology. 2008. Vol. 69. P. 2-9.
Yarali H., Zeynelogly H.B. Gonadotropin treatment in patients with polycystic ovary syndrome. // Reprod. Biomed. Online. 2004. Vol. 8. P. 528-537