Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
При кормлении жвачных применение мочевины с адсорбентами в качестве кормовой добавки эффективность поддержания концентрации аммиака в рубцовой среде на оптимальном уровне зависит от влияния двух факторов: активности рубцовой уреазы и эффективности сорбции аммиака. Для того, чтобы оценить количественно параметры рубцовой уреазы и подобрать оптимальные условия для применения добавок мочевины, необходимо провести отработку оптимальных условий проведения лабораторных тестов и анализа получаемых данных. Цели исследования: 1) разработать протоколы анализа данных динамического теста in vitro с введением мочевины и регистрацией накопления аммиака в среде с источником уреазной реакции и сорбентами аммиака; 2) по данным динамического теста оценить кинетические характеристики активности рубцовой уреазы и действия сорбентов аммиака; 3) оценить для разных сорбентов эффекты предварительного насыщения их расплавленной мочевиной. В проведенном исследовании разработаны оригинальные протоколы планирования опыта и анализа данных динамического теста По данным регистрации накопления аммиака в среде определены значения кинетических параметров активности уреазы рубцовой микрофлоры по мочевине: Vmax = 45 мг/час на 100 мл среды и Km = 22 мг/100 мл = 3,6 мМ. Из исследованных сорбентов оксид кремния, шунгит и тиксозит менее эффективны по скорости сорбции аммиака, по сравнению с вермикулитом. Подготовленные для исследования комплексы диоксида кремния, шунгита, тиксозита и вермикулита с мочевиной, поглощённой в расплавленном состоянии, неустойчивы, при инкубации в жидкой среде мочевина быстро выходит в среду, и образующийся аммиак становится легко доступным субстратом для уреазы. Выявленная при инкубации комплекса активированного угля с мочевиной линейная зависимость концентрации аммиака от времени инкубации свидетельствует о равномерном поступлении мочевины в среду
1. Гусаров И., Фоменко П., Богатырева Е. О необходимости нормирования содержания мочевины в кормах для КРС. // Комбикорма. 2020. № 10. С. 56-58. DOI: 10.25741/2413-287X-2020-10-3-123. – EDN IFVCXS.
2. Боголюбова Н.В., Долгошева Е.В. Процессы пищеварения и переваримость питательных веществ у откармливаемых бычков при использовании синтетических азотистых соединений с цеолитами. // Известия Самарской государственной сельскохозяйственной академии. 2015. № 1. С. 81-85. https://bulletin.ssaa.ru/1997-3225/article/view/22937
3. Журавлев М., Истомин А. Защищенная мочевина в кормах для коров. // Наше сельское хозяйство. 2021. № 14. С. 16-19.
4. Кириллов Н.К., Алексеев Г.А. Опыт применения цеолитов Чувашской республики и их смеси с синтетическими азотсодержащими веществами в кормлении животных и птиц, // Ветеринарный врач. – 2008. № 5. С. 41-43. EDN JSJKWL.
5. Конорев М.Р., Остренко К.С., Кузнецова Т.С. Клиническая фармакология энтеросорбентов нового поколения. // Вестник фармации № 4. 2013. С. 79-85.
6. Кузнецов А.С. Влияние N-карбомилглутамата на утилизацию свободного аммиака в организме и молочную продуктивность коров, // Молочное и мясное скотоводство. 2022. № 1. С. 32-35. DOI 10.33943/MMS.2022.60.30.007. – EDN UXVUNK.
7. Лушников Н.А., Столбова М.Е. Рудецкая Е.В Кормовая добавка оптиген в рационах лактирующих коров. // Кормление сельскохозяйственных животных и кормопроизводство. 2011. № 10. С. 12-16. EDN QIKGIL.
8. Петухова, Е., Баймишев М.Х., Шарымова Н. Кормовая добавка Оптиген в рационе высокопродуктивных коров. // Ветеринария сельскохозяйственных животных. 2023. № 4. С. 61-68. EDN WZTUEK.
9. Романенко Л.В., Пристач Н.В., Пристач Л.Н. Рациональное использование протеина корма высокопродуктивными коровами. // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. 2018. № 1. С. 119-124.
10. Саранчина Е.Ф. эффективность включения мочевино - формальдегидной смолы (МФС) в качестве протеиновой добавки в рационы молодняка крупного рогатого скота на откорме. // Вестник Тамбовского университета. Серия: Естественные и технические науки. 2011. Т. 16, № 2. С. 676-677. EDN NTOCGP.
11. Саранчина Е.Ф., Кургузкин В.Н. Экономическая эффективность использования МФС в рационе крупного рогатого скота. // Вестник АПК Верхневолжья. 2011. № 1. С. 73-76. EDN OIVYYN.
12. Ташбулатов А.А. Применение цеолитов в сочетании с синтетическими азотистыми веществами при откорме бычков: дисс. к.вет.н. Чебоксары, 2007. 19 c.
13. Тляумбетова Р.Ф., Ишмуратов Х.Г. Влияние сибайского цеолита и диаммоний- фосфата на молочную продуктивность коров. // Аграрный вестник Верхневолжья. 2016. № 2. С. 29-36. EDN WBVTNX.
14. Филиппова О.Б., Саранчина Е.Ф. Технологические свойства молока при скармливании лак тирующим коровам мочевино - формальдегидной смолы в составе концентратов. // Зоотехния. 2010. № 3. С. 21-23. EDN KZSFLP.
15. Черепанов Г.Г., Макар З.Н. Имитационное моделирование субстратного гомеостаза секреторных клеток молочной железы. // Доклады РАСХН. 2007. № 2. С. 36-39.
16. Черепанов Г.Г., Кузина И.Н. Количественный анализ процессов микробной ферментации и всасывания субстратов у коров (вычислительная модель) // С.-х. биология, 1993, 4: 118-131.
17. Cant J.P., Mc Bride B.W. Mathematical analysis of the relationship between blood flow and uptake of nutrients in the mammary glands of a lactating cow. // J. Dairy Res. 1995. Vol. 62: P. 405-422.
18. Dijkstra J., Neal H.D., Beever D.E., France J. Simulation of nutrient digestion, absorption and outflow in the rumen: model description. J. Nutr., 1992, 122: 2239.
19. Getahun D., Alemneh T., Akeberegn D., Getabalew M., Zewdie D. Urea metabolism and recycling in ruminants. // Biomed. J. Sci. Tech. Res. 2019. Vol. 20. nr 1. BJSTR. MS.ID.003401.
20. Griswold K. E., Apgar G. A., Bouton J., Firkins J. L. Effects of urea infusion and ruminal degradable protein concentration on microbial growth, digestibility, and fermentation in continuous culture. // J. Anim. Sci. 2003.Vol. 81. Iss. 1. P. 329-336, https://doi.org/10.2527/2003.811329x