Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Цель работы – выявление динамики содержания в крови прогестерона (P4) и хорионического гонадотропина (HCG)в ранний период гестации и оценка эффективности применения нестероидных противовоспалительных препаратов (НПВП) для профилактики эмбриональной смертности у коров. У 180 коров голштинской породы 3-7-летнего возраста на 17-е и 28-е сутки после искусственного осеменения определяли содержание P4 и HCG и методом иммуноферментного анализа (ИФА) с использованием тест-систем ИммуноФа-ПГ и ИммуноФа-β-ХГЧ (Россия) соответственно. Чувствительность анализа Р4 – 0,4 нМ и HCG – 0,5 МЕ/л. О наличии или отсутствии эмбриона в матке судили по концентрации P4 и HCG в сыворотке крови на 17-е и 28-е сутки и на основании двукратного ультразвукового исследования (УЗИ) на 30-е и 60-е сутки. В качестве НПВП использовали препараты «Метакам» и «Нековаль», которые отличаются селективностью действия в отношении циклооксигеназ разного типа. Препараты вводили двум группам коров (Iи II, n=60) парентерально однократно на 15-е сутки после осеменения (IIIгруппа –контрольная). В период 17-28 суток формирования эмбриона концентрация Р4 в сыворотке крови в опытных группах была выше в сравнении с контролем в два раза (на 1,8 нМ, Р<0,05), а концентрация и HCG к 28-му дню – на 0,7 МЕ/л (Р<0,05). Это даёт основание заключить, что гипопрогестеронемия была одной из причин ранней эмбриональной смертности в контрольной группе коров. Восполнение дефицита прогестерона у высокопродуктивных животных обеспечило повышение у них сохранности беременности в среднем на 6,25% (выявлено по второму тесту, P<0,001). Сделано заключение о патогенетической значимости простагландинов в нарушении эмбрионального развития и целесообразности использования селективных ингибиторов синтеза простагландина на 15-й день после искусственного осеменения.
$11. Коровушкин А.А. Совершенствование скота чёрно-пестрой породы по генетической устойчивости к различным заболеваниям. Рязань: Узорочье, 2004. 191 с.
$12. Нефедова С.А., Коровушкин А.А., Шашурина Е.А., Иванов Е.С.Воспроизводительные функции и фенотипические маркеры устойчивости животных к заболеваниям в аспекте адаптивности к экологическим условиям. Формирование иммуногенетических маркеров устойчивости животных к различным заболеваниям // В сб.: Экологическая адаптивность, стрессоустойчивость и резистентность животных. Рязань: Рязанский ГАТУ, 2012. С. 91-101.
$13. Нежданов А.Г. Пути повышения эффективности гормональной коррекции репродуктивных функций молочных коров. // Сб. матер. конф. ВИЖ. М., 2007. С. 241-246.
$14. Племяшов К.В. Воспроизводительная функция у высокопродуктивных коров при нарушении обмена веществ и её коррекция: автореф. дисс… д.вет.н. СПб, 2010. 39 с.
$15. Хохрин С.Н. Кормление сельскохозяйственных животных. М.: КолосС, 2006. 688 с.
$16. Чомаев А.М., Хмылов А.Г. Методы нормализации воспроизводительной функции у коров. М.: Мосагроген, 2005. 67 с.
$17. Янчуков И.Н., Мороз Т.А., Панфёров В.В. Пренатальные потери у высокопродуктивных коров. // Молочное и мясное скотоводство. 2011. Т. 8. С. 2-4.
$18. Melendez P., Gonzalez G., Aguilar E., Laura O., Risco C., Archibald L.F. Comparison of two estrus-synchronization protocols and timed artificial insemination in dairy cattle. // J. Dairy Sci. 2006. Vol. 89. P. 4567-4572. DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(06)72506-1
$19. Green M.P., Hunter M.G., Mann G.E. Relationship between maternal progesterone secretion and embryo development on day 5 of pregnancy in dairy cows. // Anim. Reprod. Sci. 2005. Vol. 88. P. 179-189. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2004.12.007
$110. Sterry R.A., Welle M.L., Fricke P.M. Treatment with Gonadotropin-Releasing Hormone after first timed artificial insemination improves fertility in noncycling lactating dairy cows. // J. Dairy Sci. 2006. Vol. 89. P. 4237-4245. DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(06)72469-9
$111. Patel H., Bhartiya D., Parte S. et al. Follicle stimulating hormone modulates ovarian stem cells through alternately spliced receptor variant FSH-R3. // J. Ovar. Res. 2013. Vol. 6. nr 52. DOI: org/10.1186/1757-2215-6-52
$112. Sá Filho M.F., Gonella-Diaza A.M., Sponchiado M. et al. Impact of hormonal modulation at proestrus on ovarian responses and uterine gene expression of suckled anestrous beef cows. // J. Anim. Sci. Biotechnol. 2017. Vol. 8. nr 79. DOI: org/10.1186/s40104-017-0211-3
$113. Lopez-Gatius F., Santolaria P., Martino A., Delatang F., De Rensis P. The effects of GnRH treatment at the time of AI and 12 days later on reproductive performance of high producing dairy cows during the warm season in north-estern Spain. // Theriogenology. 2006. Vol. 65. P. 820-830. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2005.07.002
$114. Franco M., Block J., Jousan F.D., de Castro P.L.A., Brad A. M., Franco J.M., Grisel F., Monson R.L., Rutledge J.J., Hansen P.J. Effect of transfer of one or two in vitro-produced embryos and post-transfer administration of gonadotropin releasing hormone on pregnancy rates of heat-stressed dairy cattle. // Theriogenology. 2006a. Vol. 66. P. 224-233. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2005.11.005
$115. Franco M., Thompson P.M., Brad A.M., Hansen P.J. Effectiveness of administration of gonadotropin-releasing hormone at days 11, 14 or 15 after anticipated ovulation for increasing fertility of lactating dairy cows and non-lactating heifers. // Theriogenology. 2006b, Vol. 66. P. 945-954 DOI: 10.1016/j.theriogenology.2005.12.014
$116. Chagase S.J., Diniz P., Lopes da Costa L. Accessory corpora lutea induced by HCG treatment enhanced survival of half embryos in high yielding lactating dairy cows. // In: Proc. of 16th ICAR. Budapest, 2008. Р. 54-56.
$117. O’Brien T.J., Kalmin M.M., Harralson A.F. et al. Association between the luteinizing hormone/chorionic gonadotropin receptor (LHCGR) rs4073366 polymorphism and ovarian hyperstimulation syndrome during controlled ovarian hyperstimulation. // Reprod. Biol. Endocrinol. 2013. Vol. 11.nr 71. DOI: org/10.1186/1477-7827-11-71
$118. Bech-Sabat G., Lopez-Gatius F., Garcia-Ispierto I., Santolaria J.P., Serrano B., Nogareda C., de Sousa N.M., Beckers J.F., Yaniz J. Pregnancy patterns during the early fetal period in high producing dairy cows treated with GnRH or progesterone. // Theriogenology. 2009. Vol. 71. P. 920-929. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2008.10.013
$119. Shabunin S.V., Nezhdanov A.G., Mikhalev V.I., Pasko N.V., Prokulevich V.A., Potapovich M.I., Gricuk V.A., Volkova I.V. Interferon-tau and formation of pregnancy in cows. // Agricultural Biology. 2019. Vol. 54. nr 2. P. 259-268. DOI: 10.15389/agrobiology.2019.2.259rus
$120. Demmers R.J., Derecka K., Flint A. Trophoblast interferon and pregnancy. // Reproduction. 2001. Vol. 121. P. 41-49.
$121. Forde N., Lonergan P. Interferon-tau and fertility in ruminants. // Reproduction. 2017. Vol. 154. nr 5. P. F33-F43. DOI: 10.1530/REP-17-0432
$122. Hansen T.R., Sinedino L.D.P., Spencer T.E. Paracrine and endocrine actions of interferon tau (INFT). // Reproduction. 2017. Vol. 154.nr5. P. F45-F59. DOI: 10.1530/REP-17-0315
$123. Zhao G., Jiang K., Zhang T., Wu H., Qiu C., Deng G. Specific interferon tau gene-regulation networks in bovine endometrial luminal epithelial cells. // Theriogenology. 2018. Vol. 105. nr 1. P. 51-60. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2017.09.004
$124. Basavaraja R., Przygrodzka E., Pawlinski B., Gajewski Z., Kaczmarek M.M., Meidan R. Interferon-tau promotes luteol endothelial cell survival and inhibits specific luteolytic genes in bovine corpus luteum. // Reproduction. 2017. Vol. 154. nr 5. P. 559-568. DOI: 10.1530/REP-17-0290
$125. Shirasuna K., Matsumoto H., Matsuyama S., Kimura K., Boliwein H., Miyamoto A. Possible role of interferon tau on the bovine corpus luteum and neutrophils during the early pregnancy. // Reproduction. 2015. Vol. 150. nr 3. P. 217-225. DOI: 10.1530/REP-15-0085
$126. Tuo W.B., Macmillan H., Gunter N., Bazer F.M., Brown W.C. Upregulation of interleukin-4 and IFN-gamma expression by IFN-tau, a member of the type I IFN family. // J. Interfer. Cytok. Res. 1999. Vol. 19. nr 2. P. 179-187. DOI: 10.1089/107999099314324
$127. Chon T.W., Bixler S. Interferon-tau: current applications and potential in antiviral therapy. // J. Interfer. Cytok. Res. 2010. Vol. 30. nr 7. P. 477-485. DOI: 10.1089/jiz.2009.0089
$128. Kohara J., Nishikura Y., Konnai S., Tajima M., Onuma M. Effects of interferon-tau on cattle persistently infected with bovine viral diarrhea virus. // Japan. J. Veter. Res. 2012. Vol. 60. nr 2-3. P. 63-70.
$129. Talukder A.K., Rashid M.B., Yousef M.S., Kusama K., Shimizu T., Shimada M., Suarez S.S., Imakawa K., Miyamoto A. Oviduct epithelium induces interferon-tau in bovine Day-4 embryos, which generates an anti-inflammatory response in immune cells. // Scient. Rep. 2018. Vol. 8. nr1. P. 7850. DOI: 10.1038/s41598-018-26224-8
$130. Rashid M.B., Talukder A.K., Kusama K., Haneda S., Takedomi T., Yoshino H., Moriyasu S., Matsui M., Shimada M., Imakawa K., Miyamoto A. Evidence that interferon-tau secreted from Day-7 embryo in vivo generates anti-inflammatory immune response in the bovine uterus. // Biochem. Biophys. Res. Commun. 2018. Vol. 500.nr 4. P. 879-884. DOI: 10.1016/j.bbrc.2018.04.178
$131. Guzeloglu A., Erdem H., Saribay M.K., Thatcher W.W., Tekeli T. Effect of the administration of flunixin meglumine on pregnancy rates in Holstein heifers. // Veter. Rec. 2007. Vol. 160. P. 404-406. DOI: 10.1136/vr.160.12.404
$132. Merrill M.L., Ansotegui R.P., Burns P.D., MacNeil M.D., Geary T.W. Effects of flunixin meglumine and transportation on establishment of pregnancy in beef cows. // J. Anim. Sci. 2007. Vol. 85. P. 1547-1554. DOI: 10.2527/jas.2006-587
$133. Lucaci E. Effects of flunixin meglumine (FM) on reproductive events in fixed timed artificial inseminated cows. // Proc.16th ICAR. Budapest, 2008. Abstr. P. 50.
$134. Weems C.W., Weems Y.S., Randel R.D. Prostaglandins and reproduction in female farm animals. // Veter. J. 2006. Vol. 171. P. 206-228. DOI: 10.1016/j.tvjl.2004.11.014
$135. Robinson R.S., Hammond A.J., Wathes D.C., Hunter M.G., Mann G.E. Corpus luteum-endometrium-embryo interactions in the dairy cow: underlying mechanisms and clinical relevance. // Reprod. Domest. Anim. 2008. Vol. 42. Suppl. 2. P. 104-112. DOI: 10.1111/j.1439-0531.2008.01149.x
$136. Lopez H., Caraviello D.Z, Satter L.D., Fricke P.M., Wiltbank M.C. Relationship between level of milk production and multiple ovulations in lactating dairy cows. // J Dairy Sci. 2005. Vol. 88. P. 2783-2793. DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(05)72958-1
$137. Wiltbank M., Lopez H., Sartori R., Sangsritavong S., Gumen A. Changes in reproductive physiology of lactating dairy cows due to eleveted steroid metabolism. // Theriogenology. 2006. Vol. 65. P. 17-29. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2005.10.003
$138. Von Krueger X., Heuwieser W. Effect of flunixin meglumine and carprofen on pregnancy rates in dairy cattle. // J. Dairy Sci. 2010. Vol. 93. nr 11. P. 5140-5146. DOI: 10.3168/jds.2010-3072
$139. Odensvik K., Gustafsson H., Kindahl H., The effect on luteolysis by intensive oral administration of flunixin granules in heifers. // Anim. Reprod. Sci. 1998. Vol. 27. nr 1-2. P. 35-44. DOI:10.1016/s0378-4320(97)00090-0
$140. Guzeloglu A., Erdem H., Cinar M., Kilic K., Talmac M., Gorgundur A., Gumen A. Effect of ketoprofen administration 15 and 16 days after AI on conception rates in lactating dairy cows. // Proc. 16th ICAR. Budapest, 2008. P. 43.
$141. Stevenson J.S., Tiffany S.M., Inskeep E.K., Maintenance of pregnancy in dairy cattle after treatment with human chorionic gonadotropin or gonadotropin-releasing hormone.// J. Dairy Sci. 2008. Vol. 91. nr 8. P. 3092-3101. DOI: 10.3168/jds.2008-1027