Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
В современной селекционной работе актуальным является разведение высокопродуктивных животных, устойчивых к различным заболеваниям, в том числе связанным с нарушением метаболических процессов. Цель данной работы – оценка аллельного разнообразия гена лептина и степени ассоциации его однонуклеотидных полиморфизмов с биохимическими маркерами предрасположенности к развитию кетоза у коров Уральской популяции . крупного рогатого скота. Исследованы 3 однонуклеотидных полиморфизма гена LEP крупного рогатого скота: Y7F (n=245), R25C (n=224), A80V (n=245). Выявлено распределение частот встречаемости аллелей и генотипов для R25C: C* – 0,49 и T* – 0,51; C/C – 20,1%, T/C – 58,9%, T/T – 21%; для A80V: A* – 0,68 и V* – 0,32; A/A – 43,27%, A/V – 49,39%, V/V – 7,34%. Для этих двух полиморфизмов в исследованной популяции наблюдается равновесное сцепление. При изучении полиморфизма Y7F (n=245) гомозигот по аллелю Т* не обнаружено. На основании клинического анамнеза и исследования показателей биохимичесакогг состава крови, животные были ранжированы по фенотипическим группам по отношению к предрасположенности к развитию метаболических расстройств, протекающих по типу кетоза: «устойчивые», «предрасположенные» и «нейтральные». В группе с фенотипом «предрасположенный» аллельной комбинации T*/T* (R25C/A80V) соответствуют наименьшие значения различия в уровне НЭЖК по отноению к нейтральному фенотипу, что может свидетельствовать о преимуществе комбинации данных аллелей
1. Белоусов А.И. Иммунобиохимическая и морфофункциональная характеристика высокопродуктивных коров при разной эпизоотической и микотоксикологической нагрузке: автореф. дисс… д.вет.н.: 06.02.02 Екатеринбург. 2021. 30 с.
2. Белоусов А.И., Красноперов А.С., Опарина О.Ю., Суздальцева М.А. Метаболические признаки алиментарного кетоза у высокопродуктивных коров. // Труды Всероссийского НИИ экспериментальной ветеринарии. 2018. Т. 80. № 1. С. 88-100. DOI: 10.30917/ATT-PRINT-2018-1.
3. Ковалюк Н.В, Якушева Л.И., Кузьминова Е.В., Ширяева Е.В., Абрамов А.А., Семененко М.П. Связь полиморфизмов гена лептина с предрасположенностью крупного рогатого скота к кетозу. // Генетика и разведение животных. 2020. № 3. С. 20-26. DOI: 10.31043/2410-2733-2020-3-20-26.
4. Соколова О.В., Бытов М.В., Белоусов А.И. и др. Генетическая предрасположенность к кетозу у крупного рогатого скота: современное состояние. // Генетика. 2023. Т. 59. № 3. С. 294-307. DOI: 10.31857/S0016675823030116
5. Чесноков Ю.В., Артемьева А.М. Ассоциативное картирование у растений (обзор). // Сельскохозяйственная биология. 2011. № 5. С. 3-16.
6. Якушева Л.И, Абрамов А.А., Ковалюк Н.В., Сацук В.Ф. Связь полиморфизмов R25C и A80V гена лептина быков-производителей с оценкой их дочерей на предрасположенность к возникновению кетоза. // Сборник трудов Краснодарского научного центра по зоотехнии и ветеринарии. 2019. Т. 8. № 3. С. 24-27. DOI: 10.34617/y47d-6h82.
7. Bauer EA, Kułaj D, Sawicki S, Pokorska J. Gene association analysis of an osteopontin polymorphism and ketosis resistance in dairy cows. // Sci. Rep. 2023. Vol. 13. nr 1. P. 21539. DOI: 10.1038/s41598-023-48771-5.
8. Devlin B, Risch N. A comparison of linkage disequilibrium measures for fine-scale mapping. // Genomics. 1995. Vol. 29. nr 2. P. 311-22. DOI: 10.1006/geno.1995.9003.
9. Feuermann Y., Mabjeesh S.J., Shamay A. Leptin affects prolactin action on milk protein and fat synthesis in the bovine mammary gland. // J. Dairy Sci. 2004. Vol. 87. № 9. P. 2941–2946. DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(04)73425-6.
10. Frühbeck G.A. heliocentric view of leptin. // Proc. Nutr. Soc. 2001. Vol. 60. nr 3. P. 301–318. DOI: 10.1079/pns200196.
11. Houseknecht K.L., Baile C.A., Matteri R.L., Spurlock M.E. The biology of leptin: a review. // J. Anim. Sci. 1998. Vol. 76. nr 5. P. 1405-1420. DOI: 10.2527/1998.7651405x.
12. Kroezen V, Schenkel F.S, Miglior F, Baes C.F, Squires E.J. Candidate gene association analyses for ketosis resistance in Holsteins. // J. Dairy Sci. 2018. Vol. 101. nr 6. P. 5240-5249. DOI: 10.3168/jds.2017-13374.
13. Nayeri S, Schenkel F, Fleming A et al. Genome-wide association analysis for β-hydroxybutyrate concentration in Milk in Holstein dairy cattle. // BMC Genet. 2019. Vol. 20. nr 1. P. 58. DOI: 10.1186/s12863-019-0761-9.
14. Silva L.F., VandeHaar M.J., Weber Nielsen M.S., Smith G.W. Evidence for a local effect of leptin in bovine mammary gland. // J. Dairy Sci. 2002. Vol. 85. nr 12. P. 3277-3286. DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(02)74416-0.
15. Smith R.D. The nonlinear structure of linkage disequilibrium. // Theor Popul Biol. 2020. Vol. 134. P. 160-170. DOI: 10.1016/j.tpb.2020.02.005.
16. Soares RAN, Vargas G., Duffield T., Schenkel F., Squires E.J. Genome-wide association study and functional analyses for clinical and subclinical ketosis in Holstein cattle. // J Dairy Sci. 2021. Vol. 104. nr 9. P. 10076-10089. DOI: 10.3168/jds.2020-20101.
17. Solé X., Guinó E., Valls J., Iniesta R., Moreno V. SNPStats: a web tool for the analysis of association studies. // Bioinformatics (Oxford, England). 2006. Vol. 22. nr 15. P. 1928-1929. I: 10.1093/bioinformatics/btl268.
Szyda J., Komisarek J. Statistical modeling of candidate gene effects on milk production traits in dairy cattle. // J. Dairy Sci. 2007. Vol. 90. nr 6. P. 2971-2979. DOI: 10.3168/jds.2006-724