Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Цель работы – изучить особенности химического состава скелетных мышц, печени и гонад у леща Abramis brama L. Горьковского водохранилища в зависимости от возраста и стадии зрелости половых желез. В пробах тканей определяли относительное содержание воды, сухого вещества, жира, белка, безазотистых экстрактивных веществ (БЭВ) и золы. Показано, что химический состав исследованных тканей зависит от вида рыб, трофического статуса и пола. Содержание белка и минеральных веществ в мышцах у леща меньше, чем у судака (активного хищника) и чехони (планктофага), а количество жира меньше, чем у чехони. Содержание белка в мышцах у ювенильных особей больше, чем у половозрелых лещей. В мышечной ткани самцов леща выявлено повышенное содержание жира, минеральных веществ и БЭВ по сравнению с самками и неполовозрелыми особями. По сравнению с внутренними органами, в скелетных мышцах накапливается больше белка и минеральных веществ, в гонадах интенсивнее аккумулируется сухое вещество, в том числе жир; печень отличается повышенным содержанием воды и БЭВ. В то же время в мышцах содержится наименьшее количество жира и БЭВ, а в гонадах – белка и зольных веществ. Процесс созревания гонад у рыб сопровождается значительными изменениями на клеточном и биохимическом уровне, при этом замедляется общий рост, а белки и липиды переносятся из соматических тканей в репродуктивные органы. Изменения химического состава гонад связаны, прежде всего, с созреванием половых продуктов и в меньшей степени зависят от возраста рыб. В процессе созревания гонад и у самок, и у самцов повышается содержание воды и БЭВ, снижается доля сухого вещества и жира; в половых продуктах у самцов увеличивается доля протеина и зольных веществ, а у самок она уменьшается. Более высокое содержание сухого вещества в гонадах самцов и самок на стадии зрелости половых желез II, по сравнению со стадией III, свидетельствует о том, что созреванию половых продуктов предшествует накопление питательных веществ, которые расходуется на стадии III. Изучение сдвигов в химическом составе тканей и органов может служить для целей оценки трофического статуса, а также в качестве индикатора экологического состояния популяций рыб и среды, в которой они обитают.
1. Байдалинова Л.С., Яржомбек А.А. Биохимия сырья водного происхождения. – М.: Моркнига, 2011. – 510 с.
2. Гладышев М.И. Незаменимые полиненасыщенные жирные кислоты и их пищевые источники для человека // Журнал Сибирского федерального университета. Биология. − 2012. – № 5. – С. 352-386.
3. Дорохова И.И. Влияние антропогенного загрязнения акваторий на активность некоторых ферментов в гонадах нерестящихся рыб // В сб.: Мат. науч. конф. «Актуальные проблемы экологии и сохранения биоразнообразия России и сопредельных стран». – Владикавказ: Сев.-Осет. гос. ун-т., 2015. – С. 81-84.
4. Клейменов И.Я. Химический и весовой состав основных промысловых рыб. − М.: Пищепромиздат, 1952. – 60 с.
5. Клейменов И.Я. Химический и весовой состав рыб водоемов СССР и зарубежных стран. − М.: ВНИРО, 1962. – 143 с.
6. Коваленко Е.О. Морфобиологическая характеристика судака (Sander lucioperca, L.) и его роль в экосистеме Краснодарского водохранилища: автореф. дисс... к.б.н. − Краснодар, 2015. – 24 с.
7. Кожабаева Э.Б. К вопросу о состоянии естественного воспроизводства рыб на нижнем участке р. Сырдарьи // В сб.: Мат. межд. конф. «Разнообразие, проблемы экологии горного Алтая и сопредельных регионов: настоящее, прошлое, будущее». – Горно-Алтайск, 2008. – С. 115-117.
8. Костылева, А.А., Флёрова Е.А. Особенности химического состава мышечной ткани леща Аbramis brama Горьковского водохранилища // Вопросы рыболовства. – 2015. – Том 16. – № 4. – С. 412-418.
9. Кривобок М.Н., Тарковская О.И. Химическая характеристика желтоперой камбалы, трески и минтая юго-восточной части Берингова моря // Труды ВНИРО. – 1964. – Т. 49. – С. 257-272.
10. Кривобок М.Н., Тарковская О.И., Карасикова А.А. Качество икры салаки различной длины, возраста и плодовитости // Труды ВНИРО. – 1970. – Т. 69. – С. 133-146.
11. Кривобок М.Н., Шатуновский М.И. О некоторых новых проблемах физиологии морских и проходных рыб // Труды ВНИРО. – 1971. – Т. 79. – С. 63-71.
12. Кузнецов В.А. Изменение биологических показателей чехони Pelecus cultratus в верхней части Куйбышевского водохранилища за время его существования // Ученые записки Казанского университета. Ест. науки. – 2011. – Т. 153. – № 2. – С. 262-273.
13. Курант В.З. Содержание белков и нуклеиновых кислот в тканях некоторых пресноводных рыб и их зависимость от возраста и сезона: автореф. дисс... к.б.н. – Тернополь, 1984. – 23 с.
14. Маляревская А.Я. Обмен веществ у рыб в условиях антропогенного евтрофирования водоемов: монография. – Киев: Наукова думка, 1979. – 256 с.
15. Маренков О.Н., Федоненко Е.В., Габибов М.М. и др. Развитие гонад леща (Abramis brama Linnaeus, 1758) в условиях Запорожского водохранилища // Извест. высш. уч. завед. Поволж. рег. Ест. науки. – 2013. – № 4. – С. 25-35.
16. Минин А.Е., Постнов Д.И., Вандышева В.В. и др. Этапы развития рыболовства и перспективы оптимизации промысла на Горьковском водохранилище // Известия КГТУ. – 2014. – № 32. – С. 217-226.
17. Мирошниченко Д.А. Сравнительная характеристика показателей обмена веществ представителей Clarias batrachus, обитающих в естественных и искусственных условиях // Инновации в АПК: проблемы и перспективы. – 2016. – Т. 9. − № 1. – С. 110-114.
18. Мурзина С.А., Нефедова З.А., Пеккоева С.Н. и др. Гистоморфологическая структура печени у плотвы (Rutilus rutilus) и щуки (Esox lucius), обитающих в разных по антропогенной нагрузке озерах // Экология. – 2014. – №. 2. – С. 147-153.
19. Никольский Г.В. Экология рыб. – М.: Высшая школа, 1963. – 368 с.
20. Панов В.П. Морфобиохимическая характеристика туловищной мускулатуры некоторых рыб семейства карповых: автореф. дисс... к.с.х.н. – М., 1982. – 22 с.
21. Паюта А.А. Анализ показателей обмена веществ карповых рыб, как одного из способов оценки загрязнений водных экосистем // Сетевой журнал ОрёлГАУ. – 2016. – Т. 7. – № 2. − С. 22-28.
22. Постнов Д.И. Закономерности формирования и рациональное использование биологических ресурсов Горьковского водохранилища: автореф. дисс... к.б.н. – Калининград, 2013. – 24 с.
23. Решетников Ю.С., Акимова Н.В., Попова О.А. Аномалии в системе воспроизводства рыб при антропогенном воздействии // Известия Самарского научного центра РАН. – 2000. – Т. 2. – №. 2. – С. 274-282.
24. Родина Т.Г. Товароведение и экспертиза рыбных товаров и морепродуктов. – М.: Академия, 2007. – 400 с.
25. Сидоров В.С.Сравнительная биохимия рыб и их гельминтов. Липиды, ферменты, белки. – Петрозаводск: Карел. филиал АН СССР, 1977. – 160 с.
26. Строганов Н.С. Экологическая физиология рыб. – М.: МГУ, 1962. – 444 с.
27. Флёрова Е.А. Физиолого-биохимические методы исследования рыб. – Ярославль: Ярославская ГСХА, 2014. – 40 с.
28. Шайдуллина Ж.М. Сезонная и возрастная динамика морфофизиологических показателей леща реки Урал: автореф. дисс... к.б.н. – Астрахань, 2009. – 24 с.
29. Шакурова Н.В., Кудрявцева Е.В. Цитоморфологические изменения печени беломорской трески (Gadus morhua maris-albi Derjugin, 1920) при паразитарных инвазиях // Ученые записки Казанского университета. Ест. науки. – 2015. – Т. 157. – №. 2. – С. 49-57.
30. Шатуновский М.И. Экологические закономерности обмена веществ морских рыб. – М.: Наука, 1980. – 288 с.
31. Шатуновский М.И., Богоявленская М.П., Вельтищева И.Ф. и др. Исследования генеративного обмена балтийской трески // Труды ВНИРО. – 1975. – Т. 96. – С. 57-62.
32. Шульман Г.E., Ревина П.И., Сафьянова Т.Е. Связь физиологического состояния с особенностями овогенеза пелагических рыб // Труды ВНИРО. – 1970. – Т. 69. – С. 63-71.
33. Шульман Г.Е. Физиолого-биохимические особенности годовых циклов рыб. – М.: Пищевая промышленность, 1972. – 368 с.
34. Andersson, T., Förlin, L., Härdig, J. et al. Physiological disturbances in fish living in coastal water polluted with bleached kraft pulp mill effluents // Can. J. Fish. Aquat. Sci. – 1988. – Vol. 45. – No. 9. – P. 1525-1536.
35. Appa Rao T. Fat and water contents of the muscle and ovary during the maturation cycle of Pseudosciaena aneus (Block) and Johnius carutta (Bloch) // Ind. J. Fish. – 1967. – Vol. 14. – No. 1-2. – P. 293-297.
36. Broeg K., Zander S., Diamant A. et al. The use of fish metabolic, pathological and parasitological indices in pollution monitoring // Helgoland Marine Research. – 1999. – Vol. 53. – No. 3. – P. 171-194.
37. Coban M.Z., Sen D. Examination of liver and muscle glycogen and blood glucose levels of Capoeta umbla (Heckel, 1843) living in Hazar Lake and Keban Dam Lake (Elazig, Turkey) // Afr. J. Biotech. – 2011. – Vol. 10. − No. 50. – P. 10271-10279.
38. Couture P., Rajotte J.W. Morphometric and metabolic indicators of metal stress in wild yellow perch (Perca flavescens) from Sudbury, Ontario: a review // J. Envir. Monit. – 2003. – Vol. 5. – No. 2. – P. 216-221.
39. Kalay M., Sangűn M.K., Ayas D. et al. Chemical composition and some trace element levels of thinlip mullet, liza ramada caught from Mersin Gulf // Ekoloji. – 2008. – Vol. 17. – No. 68. – P. 11-16.
40. Khawaja D.K. Biochemical composition of the muscle of some freshwater fishes during the pre-maturity phase // Fishery Techn. – 1966. – Vol. 3. – No. 2. – P. 94-102.
41. Ljubojevic D., Trbovic D., Lujic J.et al. Fatty acid composition of fishes from Inland waters // Bulgar. J. Agric. Sci. – 2013. – Vol. 19. – Suppl. 1. – P. 62-71.
42. Rifaat H.G.M. Proximate composition of certain Red Sea fishes // Mar. Fish. Rev. – 1984. – Vol. 46. − No. 3. – P. 71-75.
43. Venkatesan V., Gandhi V., Zacharia P.U. Observations on the utilization of the biochemical constituents during maturation of the butterfish Scatophagus argus (L. 1766) from Palk Bay, south east coast of India // Ind. J. Marine Sci. – 2013. – Vol. 42. – No. 1. – P. 75-81.
44. Vinogradov V.I. Fat content of muscle, gonads and liver of silver hake (Merluccius bilinearis) and red hake (Urophycis chuss) from the continental shelf of Southern New England in late winter // NAFO Sci. Coun. Stud. – 1985. – No. 8. – P. 57-59.
45. Zaboukas N., Miliou H., Megalofonou P. et al. Biochemical composition of the Atlantic bonito Sarda sarda from the Aegean Sea (eastern Mediterranean Sea) in different stages of sexual maturity // J. Fish Biol. – 2006. – Vol. 69. – No. 2. – P. 347-362.