Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Гормональные гонадотропные препараты широко применяются в животноводческой практике для регулирования воспроизводительной функции животных в условиях интенсивного животноводства. Одним из гонадотропинов гипофизарного происхождения является фолликулостимулирующий гормон (ФСГ, фоллитропин). Физиологическая роль ФСГ в организме животного заключается в регуляции функции половых желез. У женских особей ФСГ стимулирует рост и созревание фолликулов в яичниках, овуляцию и развитие желтых тел, у мужских – сперматогенез. Цель исследования – разработка тест-системы для количественного определения уровня ФСГ свиньи в сыворотке крови, моче и в гонадотропных препаратах. Диапазон измеряемых разработанной тест-системой концентраций ФСГ составляет 0,1 -20 нг/мл, что позволяет определять физиологическую концентрацию гормона в системной циркуляции, выявлять гормональную недостаточность, контролировать содержание введённого препарата в организме свиней и сроки его выведения. Разработанная тест-система не имеет аналогов в Российской Федерации и может применяться в ветеринарии и животноводстве для контроля репродуктивной функции свиней, в селекционной работе, а также для контроля гонадотропных препаратов на основе ФСГ свиньи, применяемых при регулировании воспроизводительной функции.
1. Вербицкий М.Ш., Фидлер Р., Матевосян К.М. и др. Моноклональные антитела к антигенам и гор-монам репродуктивной системы: использование в иммунологии репродукции // Иммунология – 1994 – № 4 – С. 26-30.
2. Завертяев Б.П. Биотехнология в воспроизводстве и селекции крупного рогатого скота – Л.: Агро-промиздат, 1989 – 610 с.
3. Кондратьева И.А., Ярилин А.А., Егорова С.Г. и др. Практикум по иммунологии – М.: Академия, 2004 – 272 с.
4. Матевосян К.Ш., Степанова И.И., Алексанкина В.В., Алексанкин А.П., Козловский Ю.Е. Разработка тест-системы для количественного определения фолликулостимулирующего гормона свиней в био-логических жидкостях методом иммуноферментного анализа // Наука, техника и образование – 2018 – № 11 – С. 24-32. DOI: 10.20861/2312-8267-2018-52-006
5. Эрнст Л.К., Сергеев Н.И. Трансплантация эмбрионов сельскохозяйственных животных – М.: Агро-промиздат, 1989. – P. 88-93.
6. Borg K.E., Lunstra D.D., Christenson R.K. Semen characteristics, testicular size, and reproductive hormone concentrations in mature duroc, meishan, fengjing, and minzhu boars // Biol. Reprod – 1993 – Vol. 49 – No. 3 – P. 515-521. PubMed PMID: 8399844. <https://doi.org/10.1095/biolreprod49.3.515>
7. Cassady J.P., Johnson R.K., Ford J.J. Comparison of plasma FSH concentration in boars and gilts from lines selected for ovulation rate and embryonal survival, and litter size and estimation of (co)variance components for FSH and ovulation rate // J. Anim. Sci. – 2000 – Vol. 78. – No. 6. – P. 1430-1435. PubMed PMID: 10875623 <https://doi.org/10.2527/2000.7861430x>
8. Dacheux F., Martinat N.. Immunocytochemical localization of LH, FSH and TSH in the fetal porcine pituitary // Cell Tissue Res. – 1983. – Vol. 228. – No. 2. – P. 277-295. PubMed PMID: 6402304. DOI:10.1007/BF0020487
9. Elwell K., Howard G.C. Chemically Modifying Antibodies // In: Basic Methods in Antibody Production and Characterization (Gary C. Howard, Delia R. Bethell, Eds). – Boca Raton-London-New York-hington: CRC Press LLC Publ., 2001. – P. 199-215.
10. Knox R.V., Vatzias G., Naber C.H., Zimmerman DR. Plasma gonadotropins and ovarian hormones during the estrous cycle in high compared to low ovulation rate gilts // J. Anim. Sci. – 2003. – Vol. 81. – No. 1. – P. 249-260. PubMed PMID: 12597396. DOI:10.2527/2003.811249x
11. Knox R.V. Recruitment and selection of ovarian follicles for determination of ovulation rate in the pig // Domest. Anim. Endocrinol. – 2005. – Vol. 29. – No. 2. – P. 385-397. Epub 2005 Apr 7. Review. PubMed PMID: 15998504. DOI:10.1016/j.domaniend.2005.02.025
12. Knox R.V. Recent advancements in the hormonal stimulation of ovulation in swine // Vet. Med. – 2015. – Vol. 5. – No. 6. – P. 309-320. DOI: 10.2147/VMRR.S68960
13. Kramer B. Changes in vascular permeability and deciduoma formation during the peri-implantation period of the rat in response to exogenous gonadotropins // Anat Rec. – 1997. – Vol. 247. – No. 1. – P. 20-24.
14. Nakane P.K., Kawaoi A.J. Peroxidase-labeled antibody. A new method of conjugation // J. Histochem. Cytochem. – 1974. – Vol. 22. – No. 12. – P. 1084-1091. DOI: 10.1177/22.12.1084
15. Noguchi M., Yoshioka K., Itoh S., Suzuki C., Arai S., Wada Y., Hasegawa Y., Kaneko H. Peripheral concentrations of inhibin A, ovarian steroids, and gonadotropins associated with follicular development throughout the estrous cycle of the sow // Reproduction. – 2010. – Vol. 139. – No. 1. – P. 153-161. PubMed PMID:19778995. DOI:10.1530/REP-09-0018
16. Papkoff H. Chemistry of the gonadotropins // In: Reproduction in Domestic Animals. 2nd Edition (Cole H.H., Cupps P.T., Eds.). – New York-San Francisco-London: Acad. Press Publ., 1969. – 684 p. (P. 70-72). eBook ISBN: 9781483263151
17. Pierce J. G., Parsons T.F. Glycoprotein hormones: structure and function // Ann. Rev. Biochem. – 1981. – Vol. 50. – P. 465-495. DOI: 10.1146/annurev.bi.50.070181.002341
18. Shaw H.J., Foxcroft G.R. Relationships between LH, FSH and prolactin secretion and reproductive activity in the weaned sow // J. Reprod. Fertil. – 1985. – Vol. 75. – No. 1. – P. 17-28. PubMed PMID: 3928882. DOI:10.1530/jrf.0.0750017
19. Soede N.M., Langendijk P., Kemp B. Reproductive cycles in pigs // Anim. Reprod. Sci. – 2011. – Vol. 124. – No. 3-4. – P. 251-258. DOI:10.1016/j.anireprosci.2011.02.025. Epub 2011 Feb 23. Review. PubMed PMID: 21397415.
20. Sower S.A., Freamat M., Kavanaugh S.I. The origins of the vertebrate hypothalamic-pituitary-gonadal (HPG) and hypothalamic-pituitary-thyroid (HPT) endocrine systems: new insights from lampreys // Gen. Comp. Endocrinol. – 2009. – Vol. 161. – No. 1. – P. 20-29. DOI: 10.1016/j.ygcen.2008.11.023. Epub 2008 Dec 3. Review. Erratum in: Gen. Comp. Endocrinol. 2009. – Vol. 163. – No. 3. – P. 342-343. PubMed PMID: 19084529.
21. Temponi M., Kageshita T., Perosa F., Ono R., Okada H., Ferrone S. Purification of murine IgG monoclonal antibodies by precipitation with caprylic acid: comparison with other methods of purification // Hybridoma. – 1989. – Vol. 8. – No. 1. – P. 85-95. PubMed PMID: 2784406.