Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Процессы, происходящие при созревании яйцеклеток животных, - одна из ключевых проблем биологии развития. являются важным компонентом клеток животных. Роль жирных кислот в процессах созревания, оплодотворения и развития яйцеклеток млекопитающих изучена недостаточно. Ранее авторами было показано, что способность морфологически нормальных ооцитов достигать invitro стадии метафаза II не зависит от морфофункционального состояния яичника коров. Неизвестно, однако, влияет ли исходное морфофункциональное состояние яичника на биохимическиe процессы в ооцитах, в частности, на их химический состав. Для определения жирнокислотного состава общих липидов ооцитов в связи с процессом ядерного созревания в данной работе объединяли данные по всем пяти морфофункциональным состояниям яичников у коров. Показано, что морфофункциональное состояние яичников существенно не влияло на жирнокислотный состав общих липидов ооцитов. Установлено, что жирные кислоты в основном представлены ненасыщенными формами, как в ооцитах с первым направительным тельцем, так и без него (76,7 и 83,1% cоответственно). Ооциты с первым направительным тельцем содержали существенно больше пальмитиновой (12,0 vs 7,3%), стеариновой (7,37 vs 5.81%) и олеиновой кислот (6.00 vs 4,63%) и меньше линолевой (37,1 vs 39,5%), линоленовой (27,0 vs 31, 3%) и арахидоновой кислот (6,33 vs 7,55%) по сравнению с ооцитами без первого направительного тельца. Выявлены устойчивые изменения в жирнокислотном составе общих липидов ооцитов крупного рогатого скота в связи с процессом ядерного созревания invitro. Это позволяет говорить о наличии некоего универсального механизма, регулирующего процесс ядерного созревания.
$11. Марри Р., Греннер Д., Мейес П., Родуэлл В. Биохимия человека. М.: Мир, 1993.
$12. Сметанина И.Г., Кривохарченко А.С., Иванова Л.Б., Журавлева Н.И. Созревание ооцитов крупного рогатого скота, взятых из яичников различного морфофункционального состояния. // Онтогенез. 2002. Т. 33. С.201-205.
$13. Aardema H., Vos P.L., Lolicato F. et al. Oleic acid prevents detrimental effects of saturated fatty acids on bovine oocytes developmental competence. // Biol. Reprod. 2011. Vol. 85. P. 62-69.
$14. Aardema H., Lolicato F., van de Lest C.H. et al.Bovine cumulus cells protect maturing oocytes from increased fatty acid levels by massive intracellular lipid storage. // Biol. Reprod. 2013. Vol. 88.P. 164.
$15. Adamiak S.J., Powell K., Rooke J.A.et al. Body composition, dietary carbohydrates and fatty acids determine post-fertilisation development of bovine oocytes in vitro. // Reproduction. 2006. Vol. 131.P. 247-258.
$16. Coenen K., Massicotte L.,Sirard M.A. Study ofnewlysynthesizedproteinsduring bovine oocytematuration in vitro usingimageanalysisoftwo-dimensional gelelectrophoresis. // Mol. Reprod. Dev. 2004. Vol. 67.P. 313-322.
$17. Dubeibe Marin D.F., da Costa N.N., di Paula Bessa Santana P. et al. Importance of lipid metabolism on oocyte maturation and early embryo development: Can we apply what we know to buffalo? // Anim. Reprod. Sci. 2019. Vol.211.P. 106220-3.
$18. Dunning K.R., Russell D.L., Robker R.L. Lipids and oocyte developmental competence: the role of fatty acids and ß-oxidation. // Society for Reprod. and Fert. 2014. Vol. 148.P. 15-27.
$19. Genicot G., Leroy J.L., Soom A.V., Donnay I.The use of a fluorescent dye, Nile red, to evaluate the lipid content of single mammalian oocytes. // Theriogenology. 2005. Vol. 63.P. 1181-1194.
$110. Gurr M.I., Harwood J.L.Lipid Biochemistry. London-New York-Tokio-Melburne-Madras: Chapman and Hall, 1991.
$111. Homa S.T., Racowsky C.,McGaughey R.W. Lipid analysisofimmaturepigoocytes. // J. Reprod. Fertil. 1986. Vol. 77.P. 425-434.
$112. Homa S.T.,Brown C.A. Changes in linoleicacidduringfolliculardevelopmentandinhibitionofspontaneous breakdown of germinal vesicles in cumulus-free bovine oocytes. // J. Reprod. Fertil. 1992. Vol. 94.P. 153-160.
$113. Isachenko V., Isachenko E., Rahimi G. et al.Ultra-structureofintracellularlipidvesiclesofporcine GV-oocytes after in vitro fertilizationandparthenogeneticactivation. // Anat. Hystol. Embryo.2003. Vol. 32.P. 126-128.
$114. Kastrop P.M.M, Bevers M.M., Destree O.H.J.,Kruip T.A.M. Analysis ofproteinsynthesis in morphologicallyclassified bovine follicularoocytesbeforeand after maturation in vitro.// Mol. Reprod. Dev. 1990. Vol. 26.P. 222-226.
$115. Kastrop P.M.M., Bevers M.M., Destree O.H.J.,Kruip T.A.M. Protein synthesisandphosphorylationpatternsof bovine oocytesmaturing in vivo.// Mol. Reprod. Dev. 1991.Vol. 29.P. 271-275.
$116. Khandoker M.Y., Tsujii H.,Karasawa D. Fattyacidanalysisofoocytes, oviductaland uterine fluidsofrabbit. Anim. Sci. Technol. 1996; 67.P. 549-553.
$117. Khandoker M.Y., Tsujii H.,Karasawa D.Fattyacidcompositionofbloodserum, oocytes, embryosandreproductivetractfluidsof rat andcomparisonwith BSA. //Anim.Sci.Technol. 1997a. Vol. 68.P. 1070-1074.
$118. Khandoker M.Y., Tsujii H.,Karasawa D.Fattyacidcompositionsofoocytes, follicular, oviductaland uterine fluidsofpigandcow.// Asian-Australian J. Anim. Sci. 1997b. Vol. 10.P. 523-527.
$119. Khandoker M.Y., Tsujii H.,Karasawa D. A kinetic study of fatty acid composition of embryos, oviductal and uterine fluids in the rabbit. // Asian-Australian J. Anim. Sci. 1998. Vol. 11.P. 60-64.
$120. Kim J.Y., Kinoshita M., Obnishi M., Fukui Y. Lipid and fatty acid analysis of fresh and frozen-thawed immature and in vitro matured bovine oocytes. // Reproduction. 2001. Vol. 122.P. 131-138.
$121. Lapa M., Marques C.C., Alves S.P. et al. Effect of trans-10 cis-12 conjugated linoleic acid on bovine oocyte competence and fatty acid composition. // Reprod. Domest. Anim. 2011.Vol. 46.P. 904-910.
$122. Leroy J.L., Vanholder T., Mateusen B. et al.Non-esterified fatty acid in follicular fluid of dairy cows and their effect on developmental capacity of bovine oocytes in vitro. // Reproduction. 2005. Vol. 130.P. 485-495.
$123. Liebermann J., Nawroth F., Isachenko V. et al. Potential importanceofvitrification in reproductivemedicine. // Biol. Reprod. 2002. Vol.67.P. 1671-1680.
$124. Marei W.F., Wathes D.C., Fouladi-Nashta A.A. The effect of linolenic acid on bovine oocyte maturation and development. // Biol. Reprod. 2009. Vol. 81.P. 1064-1072.
$125. Marei W.F., Wathes D.C., Fouladi-Nashta A.A. Impact of linoleic acid on bovine oocyte maturation and embryo development. // Reproduction. 2010. Vol. 139.P. 979-988.
$126. Marei W.F.A., De Bie J., Mohey-Elsaeed O.J. et al. Alpha-linolenic acid protects the developmental capacity of bovine cumulus-oocyte complexes matured under lipotoxic conditions in vitro. // Biol. Reprod.2017. Vol.96.P. 1181-1196.
$127. Matorras R., Ruiz J.I., Mendoza R. et al. Fattyacidcompositionoffertilization-failed human oocytes.// Hum. Reprod.1998. Vol. 13.P. 2227-30.
$128. Matos J.E., Marques C.C., Moura T.F. et al.Conjugated linoleic acid improves oocytes cryosurvival through modulation of the cryoprotectants influx rate // Reprod. Biol. Endocrinol. 2015. Vol. 13.P. 60.
$129. McEvoy T.G., Coull G.D., Broadbent P.J et al.Fattyacidcompositionoflipids in immaturecattle, pigandsheepoocyteswithintactzona pellucida. // J. Reprod. Fertil. 2000. Vol. 118.P. 163-70.
$130. Memili E., Peddinti D., Shack L.A. et al. Bovine germinal vesicle oocyte and cumulus cell proteomics. Reproduction. 2007; 33: 1107-20Menezo Y., Renard J.P., DelobelB.,Pageaux J.F. Kineticstudyoffattyacidcompositionofday 7 today 14 cowembryos.// Biol. Reprod. 1982. Vol. 26.P. 787-90.
$131. Peddinti D., Memili E., Burgess S.C. Proteomics-based systems biology modeling of bovine germinal vesicle stage oocyte and cumulus cell interaction. // Plos One. 2010. Vol. 5.P. 1-13.
$132. Prates E.G., Nunes J.T., Pereira R.M.A role of lipid metabolism during cumulus-oocyte complex maturation: impact of lipid modulators to improve embryo production. // Mediat. Inflamm. 2014. P. 692067-78.
$133. Reis A., Rooke J.A., McCallum G.J. et al. Consequences of exposure to serum, with or without E supplementation, in terms of the fatty acid content and viability of bovine blastocysts produced in vitro. // Reprod. Fertil. Dev. 2003. Vol. 15.P. 275-84.
$134. Sata R., Tsujii H., Abe H. et al. Fattyacidcompositionof bovine embryoscultured in serum-freeand serum-containing medium duringearlyembryonicdevelopment. // J. Reprod. Dev. 1999. Vol. 45: 97-103.
$135. Turathum B., Sroyraya M. Protein profile involved in mammalian oocytes maturation, fertilization and early embryogenesis (pre-implantation). // Cell. Dev. Biol.2017. Vol. 6. P. 1-9.
$136. Van Hoeck V., Leroy J.L., Arias Alvarez M. et al.Oocyte developmental failure in response to elevated nonesterified fatty acid concentrations: mechanistic insights. // Reproduction. 2013. Vol. 145.P. 33-44.
$137. Wang G., Tsujii H.,Khandoker M.Y. Fattyacidcompositionsofmouseembryo, oviductand uterine fluid.// Anim. Sci. Technol.1998.Vol. 69.P. 923-8.
$138. Zhang W., Yi K., Yan H., Zhou X. Advances on in vitro production and cryopreservation of porcine embryos. // Anim. Reprod. Sci. 2012. Vol. 132. P. 115-22.