Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
На основе ранее полученной авторами плазмиды pβLgGCSF, содержащей кодирующую последовательность гена гранулоцит-колониестимулирующего фактора (Г-КСФ) человека под контролем регуляторных элементов гена b-лактоглобулина крупного рогатого скота и плазмиды pGEMTcmvEGFP, содержащий ген EGFP (модифицированного зелёного флуоресцентного белка) под промотором cmv(цитомегаловирус) с сайтом полиаденилирования гормона роста (BGH рolyA site) КРС, сконструирована рекомбинантная плазмида pβLgGCSFcmvEGFP .
Из плазмиды pβLgGCSF по сайту XbaI вырезали фрагмент βLgGCSF, и после очистки клонировали в гидролизованный по тому же сайту вектор pBluescript II SK(-). Из плазмиды pGEMTcmvEGFPрестриктазой BsmBI (Esp3I) вырезали и очистили фрагмент cmv-EGFP-PolyA site BGH (cmvEGFP), который клонировали в плазмиду pβLgGCS по сайту NotI. Конструкция βLgGCSFcmvEGFP была вырезана рестриктазой ClaI и использована для изучения интеграции трансгена на разных стадиях онтогенеза лабораторных и сельскохозяйственных животных.
1. Авдеева Ж.И., Солдатов А.А., Алпатова Н.А., Киселевский М.В., Лысикова С.Л., Бондарев В.П., Медуницын Н.В., Мосягин В.Д., Меркулов В.А., Миронов А.Н. Биоаналоговые (биоподобные) лекарственные препараты рекомбинантного гранулоцит-колониестимулирующего фактора // Оценка качества. Биопрепараты. – 2015. – № 1. – С. 4-14.
2. Дворянчиков Г.А., Серова И.А., Андреева Л.Е., Диас Л.П.Б., Азеведо С., Серов О.Л. Секреция биологически активного гранулоцит колониестимулирующего фактора (Г-КСФ) человека в молоке трансгенных мышей // Генетика. – 2005. – Т. 41. – С. 1330-1337.
3. Езерский В.А., Иванова Л.Б., Шевченко В.Г. Создание генно-инженерной конструкции, содержащей структурный ген GCSF человека под контролем регуляторных элементов гена b-лактоглобулина крупного рогатого скота // Проблемы биологии продуктивных животных. – 2007. – Т. 1. – С. 123-131.
4. Серова И. А., Дворянчиков Г.А., Андреева Л. Е., Серов О.Л. Генно-инженерная конструкция pGoatcasGCSF, обеспечивающая продукцию гранулоцит-колониестимулирующего фактора человека в молоко трансгенных животных. – Патент RU 2422529C1, 2010.
5. Amsterdam A., Lin S., Hopkins N. The Aequorea Victoria green fluorescent protein can be used as a reporter in live zebrafish embryos // Dev. Biol. – 1995. – Vol. 171. – P. 123-129.
6. Brem G., Hartl P., Besenfelder U., Wolf E., Zinovieva N., Pfaller R. Expression of synthetic cDNA sequences encoding human insulin-like growth factor-1 (IGF-I) in mammary gland of transgenic rabbits // Gene. – 1994. – Vol. 149. – P. 331-355.
7. Chalfie M., Tu Y., Euskirchen G., Ward W.W., Prasher D.C. Green fluorescent protein as a marker for gene expression // Science. – 1994. – Vol. 263. – P. 802-805.
8. Chrenek P., Makarevich A.V. Analysis of transgenic rabbit vitrified embryos carrying EGFP gene // Slovak J. Anim. Sci. // 2011. – Vol. 44. – No. 1. – P. 1-5.
9. Devinoy E., Thepot D., Stinnakre M.-G., Fontaine M.-L., Grabowski H., Puissant C., Pavirani A., Houdebine L.-M. High level production of human growth hormone in the milk of transgenic mice: the upstream region of the rabbit whey acidic protein (WAP) gene targets transgene expression to the mammary gland // Transg. Res. – 1994. – Vol. 3. – No. 2. – P. 79-89.
10. Ebert K.M., Selgrath J.P., DiTullio P., Gordon K. Transgenic production of a variant of human tissue-type plasminigen activator in goat milk: generation of transgenic goats and analysis of expression // Bio/Technol. – 1991. – Vol. 9. – P. 835-838.
11. Freitas V.J.F., Serova I.A., Moura R.R., Andreeva L.E., Melo L.M., Teixeira D.I.A., Pereira A.F., Lopes-Jrd E.S., Diase L.P.B., Nunes-Pinheirof D.C.S., Sousa F.C., Albutara-Neto A.S., Albuquerque E.S., Melo C.H.S., Rodrigues V.H.V., Batista R.I.T., Dvoryanchikov G.A., Serov O.L. The establishment of two transgenic goat lines for mammary gland hG-CSF expression // Small Ruminant Research. – 2012. – Vol. 105. – P. 105-113.
12. Gasson J.C., Weisbart R.H., Kaufman S.E., Clark S.C., Hewick R.M., Wong G.G., Golde D.W. Purified human granulocyte-macrophage colony-stimulating factor: direct action on neutrophils // Science. – 1984. – Vol. 226. – No. 4680. – P. 1339-1342.
13. Gordon K., Lee E., Vitale J.A., Smith A.E., Westphal H., Hennighausen L. Production of human tissue plasminogen activator in transgenic mouse milk // Nature Biotechn. – 1987. – Vol., 5. – P. 1183-1187. DOI: 10.1038/nbt1187-1183
14. Heim R., Prasher D.C., Tsien R.Y. Wavelength mutations and posttranslational autoxidation of green fluorescent protein // Proc. Natl. Acad. Sci. USA. – 1994. – Vol. 91. – P. 12501-12504.
15. Ikawa M., Kominami K., Yoshimura Y., Tanaka K., Nishimune Y., Okabe M. A rapid and non-invasive selection of transgenic embryos before implantation using green fluorescent protein (GFP) // FEBS Lett. – 1995. – Vol. 375. – P. 125-128.
16. Iqbal K., Barg-Kues B., Broll S., Bode J., Niemann H., Kues W.A. Cytoplasmic injection of circular plasmids allows targeted expression in mammalian embryos // BioTechniques. – 2009. – Vol. 47. – P. 959-968. DOI: 10.2144/000113270
17. Kato M., Yamanouchi K., Ikawa M., Okabe M. Efficient selection of transgenic mouse embryos using EGFP as a marker gene // Mol. Reprod. Dev. – 1999. – Vol. 54. – P. 43-48.
18. Ko J.H., C.-S. Lee, K.H. Kim, M.-G. Pang, J. Koo. Production of biologically active human granulocyte colony stimulating factor in the milk of transgenic goat // Transgenic Research. – 2000. – Vol. 9. – P. 215-222.
19. Korhonen V.P., Tolvanen M., Hyttinen J.M., Uusi-Oukari M., Sinervirta R., Alhonen L., Jauhiainen M., Janne O.A., Janne J. Expression of bovine beta-lactoglobulin/human erythropoietin fusion protein in the milk of transgenic mice and rabbits // Eur. J. Biochem. – 1997. – Vol. 245. – P. 482-489
20. Metcalf D., Nicola N.A. The hematopoietic colony-stimulating factor // In: From Biology to Clinical Applications. – Cambridge: Cambridge University Press. – 1995. – P. 44-55.
21. Nicola N.A., Begley C.G., Metcalf D. Identification of the human analogue of a regulator that induces differentiation in murine leukaemic cells // Nature. – 1985. – Vol. 314. – No. 6012. – P. 625-628.
22. Nomura H., Imazeki I., Oheda M., Kubota N., Tamura M., Ono M., Ueyama Y., Asano S. Purification and characterization of human granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF) // EMBO J. – 1986. – Vol. 5. – P. 871-876.
23. Serova I.A., Dvoryanchikov G.A., Andreeva L.E., Burkov I.A., Dias L.P., Battulin N.R., Smirnov A.V., Serov O.L. A 3,387 bp 50-flanking sequence of the goat alpha-S1-casein gene provides correct tissue-specific expression of human granulocyte colony-stimulating factor (hG-CSF) in the mammary gland of transgenic mice // Transgenic Res. – 2012. – Vol. 21. – P. 485-498.
24. Takada T., Iida K., Awaji T., Itoh K., Takahashi R., Shibui A., Yoshida K., Sugano S., Tsujimoto G. Selective production of transgenic mice using green fluorescent protein as a marker // Nat. Biotechnol. – 1997. – Vol.15. – P. 458-461.
25. Whitelaw, C.B., Harris, S., McClenaghan, M., Simons, J.P. and Clark, A.J. Position-independent expression of the ovine beta-lactoglobulin gene in transgenic mice // Biochem. J. – 1992. – Vol. 286. – P. 31-39.
26. Wright G., Carver A., Cottom D., Reeves D., Scott A., Simons P., Wilmut I., Garner I., Colman A. High level expression of active human alpha-1-antitrypsin in the milk of transgenic sheep // Biotechnology (NY). – 1991. – Vol. 9. – P. 830-834.