Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
ФУНКЦИОНАЛЬНОЕ СОСТОЯНИЕ КЛЕТОК ГРАНУЛЁЗЫ КОРОВ ПРИ ВОЗДЕЙСТВИИ АЛЬБУМИНА И ХОЛЕСТЕРИНА in vitro
- Номер: 4
- Страницы: 69-76
Журнал: Проблемы биологии продуктивных животных
Аннотация:
У крупного рогатого скота в период ранней лактации могут происходить нарушения в работе печени, которые приводят к изменению содержания в крови и фолликулярной жидкости различных метаболитов, в том числе альбумина и холестерина, а также к торможению роста и развития овариальных фолликулов. Цель исследования – изучение изучение пролиферативной и стероидогенной активности клеток гранулёзы коров и апоптотические изменения их in vitro при воздействии бычьего сывороточного альбумина (БСА) и холестерина в различных концентрациях. Клетки, выделенные из фолликулов диаметром 1-8 мм, культивировали в течение 48 ч в среде без сыворотки, содержащей БСА; 0,5-20,0 мг/мл) или холестерин (1-100 мкг/мл). После культивирования определяли концентрацию эстрадила-17β и прогестерона в среде и оценивали пролиферативную активность и апоптотические изменения в клетках. Повышение содержания БСА в среде до 1-20 мг/мл приводило к росту доли PCNA-позитивных клеток гранулёзы в 1,3-1,7 раза относительно, по сравнению с контролем (Р<0,05‒0,001), а холестерин не влиял на экспрессию PCNA в этих клетках. При концентрации 1-20 мг/мл БСА уменьшал в 1,5-2,3 раза (Р<0,001) долю Bax-позитивных клеток в культуре, а холестерин при концентрации 5-100 мкг/мл снижал уровень этих клеток в 1,3-1,5 раза (Р<0,05-0,001) по сравнению с контролем. Кроме того, БСА (10-20 мг/мл) уменьшал в 2,3-2,4 раза (Р<0,05-0,001) концентрацию эстрадиола-17β в среде культивирования, тогда как холестерин (2-10 мкг/мл) повышал эту концентрацию в 1,4 раза (p<0,05) по сравнению с контролем. Полученные результаты свидетельствуют о возможном участии БСА и холестерина в регуляции фолликулогенеза у коров путём модуляции функциональной активности клеток гранулёзы
Литература:
1. Соломахин А.А. Анализ распространения акушерско-гинекологических патологий у коров разных пород молочного направления продуктивности. // Зоотехния. 2018. № 12. С. 14-18.
2. Соломахин А.А., Смекалова А.А., Лебедева И.Ю. Показатели работы печени в послеотельный период у коров с депрессией овариальной функции в первую и последующие лактации. // Зоотехния. 2020. № 12. С. 20-25. DOI: 10.25708/ZT.2020.83.72.006
3. Aller J.F., Callejas S.S., Alberio R.H. Biochemical and steroid concentrations in follicular fluid and blood plasma in different follicular waves of the estrous cycle from normal and superovulated beef cows. // Anim. Reprod. Sci. 2013. Vol. 142. nr 3-4. P. 113-120. DOI: 10.1016/j.anireprosci.2013.09.009
4. Bertoni G., Trevisi E. Use of the liver activity index and other metabolic variables in the assessment of metabolic health in dairy herds. // Vet. Clin. North Am. Food Anim. Pract. 2013. Vol. 29. nr 2. P. 413-431. DOI: 10.1016/j.cvfa.2013.04.004
5. Bobe G., Young J.W., Beitz D.C. Invited review: pathology, etiology, prevention, and treatment of fatty liver in dairy cows. // J. Dairy Sci. 2004. Vol. 87. P. 3105-3124. DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(04)73446-3
6. Chagas L.M., Bass J.J., Blache D. et al. Invited review: New perspectives on the roles of nutrition and metabolic priorities in the subfertility of high-producing dairy cows. // J. Dairy Sci. 2007. Vol. 90. nr 9. P. 4022-4032. DOI: 10.3168/jds.2006-852
7. Ding T., Luo A., Yang S., Lai Z. et al. Effects of basal media and supplements on diethylstilbestrol-treated immature mouse primary granulosa cell growth and regulation of steroidogenesis in vitro. // Reprod. Domest. Anim. 2012. Vol. 47. nr 3. P. 355-364. DOI: 10.1111/j.1439-0531.2011.01879.x
8. Dobson H., Smith R., Royal M., Knight Ch., Sheldon I. The high-producing dairy cow and its reproductive performance. // Reprod. Domest. Anim. 2007. Vol. 42. Suppl. 2. P. 17-23. DOI: 10.1111/j.1439-0531.2007.00906.x
9. Fontana R., Della Torre S. The deep correlation between energy metabolism and reproduction: a view on the effects of nutrition for women fertility. // Nutrients. 2016. Vol. 8. nr 2. P. 87. DOI: 10.3390/nu8020087
10. Horlock A.D., Ormsby T.J.R., Clift M.J.D., Santos J.E.P., Bromfield J.J., Sheldon I.M. Cholesterol supports bovine granulosa cell inflammatory responses to lipopolysaccharide. // Reproduction. 2022. Vol. 164. nr 3. P. 109-123. DOI: 10.1530/REP-22-0032
11. Hoshi H., Takagi Y., Kobayashi K., Onodera M., Oikawa T. Growth requirements and long-term subcultivation of bovine granulosa cells cultured in a serum-free medium. // In Vitro Cell. Dev. Biol. 1991. Vol. 27A. nr 7. P. 578-584. DOI: 10.1007/BF02631289
12. Montagner P., Krause A.R., Schwegler E. et al. Reduction of liver function delays resumption of postpartum ovarian activity and alters the synthesis of acute phase proteins in dairy cows. // Res. Vet. Sci. 2016. Vol. 106. P. 84-88. DOI: 10.1016/j.rvsc.2016.02.015
13. Peter A.T., Vos P.L., Ambrose D.J. Postpartum anestrus in dairy cattle. // Theriogenology. 2009. Vol. 71. nr 9. P. 1333-1342. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2008.11.012
14. Roche J.R., Burke C.R., Crookenden M.A., Heiser A., Loor J.L., Meier S., Mitchell M.D., Phyn C.V.C., Turner S.A. Fertility and the transition dairy cow. // Reprod. Fertil. Dev. 2017. Vol. 30. nr 1. P. 85-100. DOI: 10.1071/RD17412
15. Rung E., Friberg P.A., Shao R. et al. Progesterone-receptor antagonists and statins decrease de novo cholesterol synthesis and increase apoptosis in rat and human periovulatory granulosa cells in vitro. // Biol. Reprod. 2005. Vol. 72. nr 3. P. 538-545. DOI: 10.1095/biolreprod.104.033878
16. Santos J.E., Bisinotto R.S., Ribeiro E.S. Mechanisms underlying reduced fertility in anovular dairy cows. // Theriogenology. 2016. Vol. 86. nr 1. P. 254-262. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2016.04.038
17. Song Y., Cheng J., Yu H., Wang Z., Bai Y., Xia C., Xu C. Early warning for ovarian diseases based on plasma non-esterified fatty acid and calcium concentrations in dairy cows. // Front. Vet. Sci. 2021. Vol. 8. Article 792498. DOI: 10.3389/fvets.2021.792498
18. Tanaka H., Shibano K., Monji Y., Kuwayama T., Iwata H. Liver condition affects bovine oocyte qualities by changing the characteristics of follicular fluid and plasma. // Reprod. Domest. Anim. 2013. Vol. 48. nr 4. P. 619-626. DOI: 10.1111/rda.12135
19. Wiltbank M.C., Gümen A., Sartori R. Physiological classification of anovulatory conditions in cattle. // Theriogenology. 2002. Vol. 57. nr 1. P. 21-52. DOI: 10.1016/s0093-691x(01)00656-2
20. Xu C., Xia C., Sun Y. et al.. Metabolic profiles using (1)H-nuclear magnetic resonance spectroscopy in postpartum dairy cows with ovarian inactivity. // Theriogenology. 2016. Vol. 86. nr 6. P. 1475-1481. DOI: 10.1016/j.theriogenology.2016.05.005