Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Опыт проведен методом латинского квадрата на трех группах коз по три головы в каждой, находившихся к началу опыта на 2-м месяце лактации. Продолжительность каждого из периодов опыта составляла три недели. В исходном периоде козы получали основной рацион (ОР) с рекомендуемым уровнем доступного протеина (ДП) и обменной энергии. В опытных периодах к основному рациону добавляли соевый шрот в количестве 150 г, соответствующем 10%-му приросту доступного сырого протеина, а также 90 г ацетата натрия 3-х водного и 36 г пропионата натрия на голову в сутки, что соответствовало 3% от обменной энергии рациона. В конце каждого опытного периода брали пробы молока и крови из яремной и молочной вен перед утренним кормлением и через 3 и 7 ч после кормления. Плазмоток через вымя определяли расчетным путем по соотношению выхода α-аминоазота с белком молока и артериовенозной разности (АВР) концентрации аминоазота по молочной железе. Активность транспорта аминокислот в секреторные клетки (Т, л/час), оценивалась в единицах клиренса по формуле: T=Q*E/(1-E), , где Q – объёмная скорость кровотока (плазмотока) через молочную железу, мл/час и E – эффективность извлеченияиз крови; E=100*(ca - cv)/ca ; ca и cv – концентрация субстрата в плазме крови яремной и молочной вен соответственно. При скармливании добавок СШ, СШ+А и СШ+П молочная продуктивность повысилась соответственно на 8,2%, 14,7% (P<0.05), 13,3% (P<0.05) и выход белка с молоком соответственно на 9,5%, 18,9% (P<0.05), 16,1% (P<0.05) по сравнению с ОР. Добавка ацетата или пропионата к высокопротеиновому рациону снижала уровень мочевины в молоке (P<0.05), что свидетельствует о более эффективном использовании аминокислот на продуктивные цели. Включение в рацион протеиновой добавки увеличило плазмоток в молочной железе. Скармливание протеиновой добавки совместно с ацетатом или пропионатом натрия оказало дополнительное стимулирующее влияние на плазмоток. Активность транспорта аминокислот в секреторные клетки при включении в рацион кормовых добавок была выше, чем на основном рационе. Заключили, что выявленный продуктивный эффект был в существенной мере связан с положительными сдвигами в показателях органного кровотока и формировании субстратного баланса в молочной железе.
1. Калашников А.П. (Ред.) Нормы и рационы кормления сельскохозяйственных животных. Справочное пособие. – М.: Агропромиздат, 2003. – 456 с.
2. Макар З.Н., Корнеева Р.И., Сапунов М.И., Черепанов Г.Г. О механизмах влияния факторов питания на функциональную активность молочной железы у жвачных животных // Проблемы биологии продуктивных животных. – 2007. – № 1. – С. 52-61.
3. Макар, З.Н. Регуляция кровоснабжения и функциональной активности молочной железы у жвачных животных: автореф. дисс. ...д.б.н. − Боровск, 2012. − 48 с.
4. Черепанов Г.Г., Решетов В.Б., Агафонов В.И., Макар З.Н. Научно-технологические приоритеты в области производства молочного сырья // Зоотехния. – 2004. – № 12. – С. 17-20.
5. Черепанов Г.Г., Макар З.Н. Физиолого-биохимические аспекты регуляции продукции молочного белка у жвачных животных // Сельскохозяйственная биология. – 2004. – № 4. – С. 24-36.
6. Черепанов Г.Г., Макар З.Н. Физиологические факторы, лимитирующие молочную продуктивность при гормональной стимуляции лактопоэза у продуктивных жвачных животных // Доклады Российской академии сельскохозяйственных наук. – 2010. – № 6. – .С. 50-53.
7. Bauman D.E., Mackle T.R. Amino acid supply and the regulation of milk protein synthesis // In: Proc. Cornel Nutr. Conf. Feed Manuf. – Rochester, NY., Cornell Univ., Ithaca, NY. – 1997. – P.196-207.
8. Bequette B.J., Backwell F.R.C. and Crompton L.A. Current concepts of amino acid and protein metabolism in the mammary gland of the lactating ruminant // J. Dairy Sci. – 1998. – Vol. 81. – No. 9. – P. 2540-2559.
9. Hanigan M.D., Cant J.P., Weakley D.C., Beckett J.L. An evaluation of postabsorptive protein and amino acid metabolism in the lactating dairy cow // J. Dairy Sci. – 1998. – Vol. 81. – No. 12. – P. 3385-3401.
10. Huhtanen P., Huhtanen P., Vanhatalo A., Varvikko T. Effects of abomasal infusions of histidine, glucose and leucine on milk production and plasma metabolites of dairy cows fed grass silage diets // J. Dairy Sci. – 2002. – Vol. 85. – No. 1. – P. 204-216.
11. Gagliostro G., Chilliard Y., Davicco Y.-J. Duodenal rapeseed oil infusion in early and midlactation cows. 3. Plasma homones and mammary apparent uptake of metabolites // J. Dairy Sci. – 1991. – Vol. 74. – P. 59-67.
12. Kohn R.A., Kalscheur K.F., Russek-Cohen E. Evaluation of models to estimate urinary nitrogen and expected milk urea nitrogen // J. Dairy Sci. – 2002. – Vol. 85. – P. 227-233.
13. Lykos T., Varga GA. Varying degradation rates of total nonstructural carbohydrates: effects on nutrient uptake and utilization by the mammary gland in high producing Holstein cows // J. Dairy Sci. – 1997. – Vol. 80. – No. 12. – P. 3356-3367.
14. Mackie T.R., Bauman D.E. Recent developmentsin the regulation of milk protein production // In: Proceedingsof the Cornell Nutrition Conference for Feed Manufactures. – Cornell University, Ithaka, N.Y., 1998. – P. 104-113.
15. Metcalf J.A., Wray-Cahen D., Chettle E.E., Sutton J.D., Beever D.E., Crompton L.A., MacRae J.C., Bequette B.J., Backwell F.R.C. The effect of increasing levels of dietary crude protein as protected soybean meal on mammary metabolism in the lactating dairy cow // J. Dairy Sci. – 1996. – Vol. 79. – P. 603-611.
16. Mitsukawa H., Shimizu O., Nishi, H. Colorimetric determination of α-amino nitrogen in urine and plasma with ninhydrin reaction // Agric. Biol. Chem. 1971. – Vol. 35. – No. 2. – P. 272-274.
17. Nielsen M.O., Madsen T.G., Hedeboe A.M. Regulation of mammary glucose uptake in goats: role of mammary gland supply, insulin, IGF-1 and synthetic capacity // J. Dairy Res. – 2001. – Vol. 68. – P. 337-349.
18. Purdie N.G, Trout D.R, Poppi D.P, Cant J.P. Milk synthetic response of the bovine mammary gland to an increase in the local concentration of amino acids and acetate // J. Dairy Sci. – 2008. – Vol. 91. – No. 1. – P. 218-228.
19. Rigout S., Hurtaud C., Lemosquet S., Bach A., Rulquin H. Lactational effect of propionic acid and duodenal glucose in cows // J. Dairy Sci. – 2003. – Vol. 86. – No. 1. – P. 243-253.
20. Rulquin H., Rigout S., Lemosquet S., Bach A. Infusion of glucose directs circulating amino acids to the mammary gland in well-fed dairy cows // J. Dairy Sci. – 2004. – Vol. 87. – P. 340-349.
21. Sears P.M., Paape M.J., Pearson R.E., Gwazdauskas F.C. Comparison between tail vein and jugular vein cannulation in cattle // J. Dairy Sci. – 1978. – Vol. 61. – No.7. – P. 974-979.
22. Yang, Y.T., Rohde J.M., Baldwin R.L. Dietary lipid metabolism in lactating cows // J. Dairy Sci. – 1978. – Vol. 61. – No. 10. – Р. 1400-1406.