Всероссийский научно-исследовательский институт физиологии, биохимии и питания животных – филиал Федерального государственного бюджетного научного учреждения «Федеральный научный центр животноводства – ВИЖ имени академика Л.К. Эрнста»
Размеры и количество областей ядрышковых организаторов (ОЯОР) в ядрах клеток у
животных характеризуют синтез рибосомальной РНК, позволяют оценить белковосинтетическую функцию клетки, а также могут отражать пролиферативный потенциал клеток
и состояние клеточной дифференцировки. Цель исследования – изучить параметры областей
ядрышковых организаторов (AgNOR), в ядрах подоцитов почечных клубочков у нутрий в
постнатальном онтогенезе для оценки белково-синтетической функции этих клеток. Объектом
исследования были 30 клинически здоровых самок и самцов нутрий стандартного окраса в
возрасте 1 сутки, 2, 4,5; 7,5 и 12 мес. Установлено, что белково-синтетическая функция
подоцитов, оцененная по параметрам областей ядрышковых организаторов, в постнатальном
онтогенезе самок и самцов нутрий изменяется с разной периодичностью и зависит от половой
принадлежности особей. Области ядрышковых организаторов в ядрах подоцитов самок и
самцов нутрий имеют округлую или близкую к ней форму. Количество ОЯОР находится в
пределах от одного до двух, при этом две зоны ОЯОР встречается намного реже. Количество
ОЯОР в подоцитах почечных клубочков нутрий с возрастом и в одноименных почках самок и
самцов, а также между левой и правой почкой особи одного пола и возраста существенно не
различается. Суммарная площадь ОЯОР в подоцитах нутрий с возрастом изменяется
волнообразно. Между одноименными почками самок и самцов нутрий статистически
значимых различий по данному показателю не выявлено, а между левой и правой почкой у
особей одного пола и возраста существенные различия по суммарной площади ОЯОР в
подоцитах установлены только у самок нутрий в возрасте 2 и 4,5 месяцев. Минимальные
значения суммарной площади ОЯОР выявлены в ядрах подоцитов почечных клубочков левой
почки у самцов в суточном возрасте, а максимальные – в подоцитах левой почки самок в
возрасте 4,5 мес. Суммарная площадь ОЯОР в ядрах подоцитов почечных клубочков самок и
самцов нутрий варьирует в пределах от 0,42 до 0,61 мкм2, при этом снижение этого показателя
отмечено у особей суточного возраста, а возрастание – у особей 4,5 и 12-мес. возраста. Доля
суммарной площади ОЯОР от общей площади ядра подоцитов почечных клубочков нутрий
варьирует в пределах от 0,024 до 0,031.
1. Албертс Б., Брей Д., Льюис Дж., Рэфф М., Роберте К., Уотсон Дж. Д. Молекулярная биология
клетки. Т. 2. – М.: Мир, 1993. – 539 с.
2. Бокуть С.Б., Герасимович Н.В., Милютин А.А. Молекулярная биология: молекулярные механизмы
хранения, воспроизведения и реализации генетической информации. – Мн.: Высшая школа, 2005. –
463 с.
3. Данников С.П. Возрастная периодизация онтогенеза нутрий // Известия Оренбургского
государственного аграрного университета. – 2018. – Т. 73. – № 5. – С. 261-264.
4. Квочко А.Н. Оценка белково-синтетической функции в почках мериносовых овец в постнатальном
онтогенезе // Цитология. – 2001. – Т. 43. – № 12. – С. 1174-1178.
5. Квочко А.Н., Криворучко А.Ю., Матюта М.А. Морфологические и функциональные показатели
почек гусей и уток в постнатальном онтогенезе // Морфология. – 2012. – Т. 141. – № 3. – С. 75.
6. Мушкамбаров Н.Н., Кузнецов С.Л. Молекулярная биология. – М.: Медицинское информационное
агентство, 2007. – 536 с.
7. Райхлин Н.Т., Букаева И.А., Пробатова Н.А., Смирнова Е.А. Аргирофильные белки областей
ядрышковых организаторов – маркеры скорости клеточной пролиферации // Архив патологии. –
2006. – Т. 68. – № 3. – С. 47-51.
8. Турилова В.И., Смирнова Т.Д., Самойлович М.П., Сухих Т.Р. Функциональная морфология
ядрышкообразующих районов хромосом и ядрышек в клетках линии множественной миеломы
человека. I. Изменение морфологии и характера серебрения ядрышкообразующих районов
хромосом клеточных линий RPMI 8226 и U 266, различающихся по степени дифференцировки, на
протяжении 7 суток после пересева клеток // Цитология. – 1998. – Т. 40. – № 6. – С. 536-547.
9. Ченцов Ю.С. Введение в клеточную биологию. – М.: Академкнига, 2004. – 495 с.
10. Armelloni S., Corbelli A., Giardino L., Li M., Ikehata M., Mattinzoli D., Messa P., Pignatari C.,
Watanabe S., Rastaldi M.P. Podocytes: recent biomolecular developments // Biomolecular Concepts. –
2014. – Vol. 5. – No. 4. – P. 319-330. DOI: 10.1515/bmc-2014-0020
11. Bukhari M.H,, Niazi S., Khan S.A., Hashmi I., Perveen S., Qureshi S.S., Chaudhry N.A., Qureshi G.R.,
Hasan M. Modified method of AgNOR staining for tissue and interpretation in histopathology // Intern. J.
Exp. Path. – 2007. – Vol. 88. – No. 1. – P. 47-53. DOI: 10.1111/j.1365-2613.2006.00522.x
12. Bundgaard-Andersen K., Flagstad A., Jensen A.L., Hellmén E., Trerè D. Correlation between the
histopathological diagnosis by AgNOR count and AgNOR area in canine mammary tumors // J. Vet. Int.
Med. – 2008. – Vol. 22. – No. 5. – P. 1174-1180. DOI: 10.1111/j.1939-1676.2008.0144.x
13. Campos P.P., Andrade S.P., Moro L., Ferreira M.A., Vasconcelos A.C. Cellular proliferation,
differentiation and apoptosis in polyether-polyurethane sponge implant model in mice // Histol. Histopath.
– 2006. – Vol. 21. – No. 12. – P. 1263-1270.
14. Canet V., Montmasson M.P., Usson Y., Giroud F., Brugal G. Correlation between silver-stained nucleolar
organizer region area and cell cycle time // Cytometry. – 2001. – Vol. 43. – No. 2. – P. 110-116.
15. Cooper G.M. The Cell: A Molecular approach. – Sunderland (MA): Sinauer Associates, 2000. – 625 p.
16. Gillespie V., Baer K., Farrelly J., Craft D., Luong R. Canine gastrointestinal stromal tumors:
immunohistochemical expression of CD34 and examination of prognostic indicators including
proliferation markers Ki67 and AgNOR // Vet. Path. – 2011. – Vol. 48. – No. 1. – P. 283-291. DOI:
10.1177/0300985810380397
17. Greka A., Mundel P. Cell biology and pathology of podocytes // Ann. Rev. Physiol. – 2012. – Vol. 74. –
P. 299-323. DOI: 10.1146/annurev-physiol-020911-153238.
18. Hernandez-Verdun D. Nucleolus: from structure to dynamics // Histochem. Cell Biol. – 2006. – Vol. 25. –
No. 1-2. – P. 127-137.
19. Hernandez-Verdun D., Roussel P., Thiry M., Sirri V., Lafontaine D.L. The nucleolus: structure/function
relationship in RNA metabolism // Wiley Interdisciplinary Reviews. RNA. – 2010. – Vol.1. – No. 3. – P.
415-431. DOI: 10.1002/wrna.39
20. Howell W.M., Black D.A. Controlled silver-staining of nucleolus organizer regions with a protective
colloidal developer: a 1-step method // Experientia. – 1980. – Vol. 36. – No. 8. – P. 1014-1015.
21. Kriz W., Lemley K.V. A potential role for mechanical forces in the detachment of podocytes and the
progression of CKD // J. Amer. Soc. Nephr. – 2015. – Vol. 26. – No. 2. – P. 258-269. DOI:
10.1681/ASN.2014030278
22. Muro E., Gébrane-Younís J., Jobart-Malfait A., Louvet E., Roussel P., Hernandez-Verdun D. The traffic
of proteins between nucleolar organizer regions and prenucleolar bodies governs the assembly of the
nucleolus at exit of mitosis // Nucleus. – 2010. – Vol. 1. – No. 2. – P. 202-211. DOI:
10.4161/nucl.1.2.11334
23. Oktay M., Eroz R., Oktay N.A., Erdem H., Başar F., Akyol L., Cucer N., Bahadir A. Argyrophilic
nucleolar organizing region associated protein synthesis for cytologic discrimination of follicular thyroid
lesions // Biotech. Histochem. – 2015. – Vol. 90. – No. 3. – P. 179-183. DOI
10.3109/10520295.2014,976271
24. Pollak M.R., Quaggin S.E., Hoenig M.P., Dworkin L.D. The glomerulus: the sphere of influence // Clin. J.
Amer. Soc. Nephr. – 2014. – Vol. 9. – No. 8. –P. 1461-1469. doi: 10.2215/CJN.09400913.
25. Scott R.P., Quaggin S.E. Review series: The cell biology of renal filtration // J. Cell Biol. – 2015. – Vol.
209. – No. 2. – P. 199-210. DOI: 10.1083/jcb.201410017
26. Slota E., Wnuk M., Bugno M., Pienkowska-Schelling A., Schelling C., Bratus A., Kotylak Z. The
mechanisms determining the nucleolar-organizing regions inactivation of domestic horse chromosomes //
J. Anim. Breed. Genet. – 2007. – Vol. 124. – No. 3. – P. 163-171.